¿Cuál es el uso del Beta Glucan en la acuicultura?

Celeldesarrollo de lunacuicultura, la cantidad y la calidad de los productos de la acuicultura también hanmejorado continuamente, y people&#Lasnecesidades de los jóvenes se han ido desplazyo progresivamente de la cantidad a la calidad. Para abordar los problemasde los residuos de antibióticos y la resistencia a los medicamentos, la investigación sobre alternativas a los antibióticos ha recibido una amplia atención. El uso de inmunoestimulantes para mejorar la función inmune de los animales acuáticos y mejorar su cuerpo#39;s se ha convertido en una de las soluciones importantes a este problema. Entre ellos, el -glucan es actualmente uno de los inmunoestimulantes más estudiados.

Después de entrar en el torrente sanguíneo, − -glucan puede unirse a receptores inmunespecíficos, activar la respuesta inmune innata, mejorar el cuerpo 's funciones inmuny antioxidantes, y así mejorar el rendimienade crecimiena[1]. Además, las características estructurales de − -glucan pueden ser la clave para sus diversas actividades biológicas [2]. − -Glucan tiene varias funciones biológicas como la regulación del crecimiento, la regulación inmune, anti-oxid, mejorar el medio ambiente intestinal, la reducción de lípidos en la sangre y anti-estrés. Ha demostrado buenos resultados de aplicación en la mejora del rendimienaproductivo de los animales acuáticos y la promoción de su salud. Tiene amplias perspectivas de desarrollo y aplicación en la industria acuícola. El autorevisa la estructura y las principales funciones biológicas del − -glucan y su aplicación en la producción acuícola, celel fende proporcionar una base de referencia para el uso del − -glucan como aditivo en la acuicultura.

1 características estructurales de − -glucan

El − -glucan se encuentra ampliamente en la naturaleza y está compuesade monómeros de D-glucosa Unidos por enlaces −. Su fórmula molecular es C18 H32 O16. El dextranpuede ser dividido en los tipos α y β. − -dextranno no es biológicamente activo, mientras que − -Dextran tiene una variedad de actividades biológicas. Los beta-glucanos selpolisacáridos complejos que se encuentran en muchos productos naturales, como la avena, la cebada, la levadura y las algas [3-4]. Debido a las diferentes fuentes de beta-glucanos, las características estructurales y las funciones biológicas que exhitambién difieren. Los beta-glucanos de diferentes fuentes tienen diferentes estructuras primarias y conformaciones. El tipo de estructura primaria se determina por enlaces glicosídicos, ramiy grado de polimerización. La conformación de los beta-glucanos suele aparecer como rizos irregulares, hésimples o hétri, y se ve afectada por la estructura primaria, las fuerzas intermoleculares, la temperatura y los disolventes [5]. Los − -glucanos de cereales están vinculados principalmente por enlaces glicosídicos − 1,3 y − 1,4 [6]; Los − -glucanos microbio algales están principalmente Unidos por enlaces glicosídicos − 1,3 y − 1,6. La actividad biológica de los glucanos de diferentes fuentes varía debido a los diferentes tipos y números de residuos de cadena lateral [4].

2 funciones biológicas de − -glucan

2.1 efectos inmunomoduladores

Los peces se defienden contra la invasión de patógenos a través de vías inmuninespecíficas. − -Glucan realza el body's respuesta inmune al aumentar la actividad de la lisozima, el número de fagociy la activación de la vía del complemena[7-8]. La levadura − -glucan puede reducir la respuesta inflamatoria regulando la expresión de citoquinas. Bajo el microscopio de luz se puede observar una reducción en la infiltración leucocitaria en la lámina propia y submucosa [9]. − -Glucan puede unirse a varios receptores en los leucocitos y activar el sistema inmune innato, mejorando así la respuesta inmune [10]. − -Glucan también puede regular macrófagos y células dendríactivando macrófagos y células dendríy células asesinnaturales. También puede unirse al receptor del complemento 3 (CR3), al receptor de lectina de tipo C1 (Dectin-1)o al receptor de tipo toll (TLR), que induce a las células Ba producir inmunoglobulina G(IgG), estimulando en última instancia el cuerpo para producir una respuesta inmune [8].

Los estudios han encontrado que la adición de -glucano a la alimentación aumenta significativamente la tasa de supervivencia de Vibrio parahaemolyticus infectados Litopenaeusvannamei[11]; Mejora significativamente la tasa de supervivencia de Oncorhynchus mykissinfectado celAeromonas salmonicida y alivia la respuesta al estrés, y el mejor efecto protector se observó cuando la cantidad de adición fue 0. El 2% fue el efecto protector óptimo [12]. Regla Et al.[13]usarella inyección intraperitoneal del virus de la carpa (vireemia de primavera del virus de la carpa, SVCV)para infectar al pez cebra (Brachydanio rerio var), y encontrarelque la alimentación de levadura → -glucan regulaba significativamente la expresión de los genes inmuninmunno específicos del pez cebra IL-1 b, IL-6, IL-8, IL-10 y TNF- -, indicando que la levadura → -glucan tiene un efecto positivo en la resistencia del pez cebra a SVCV. Álvarez-rodríguez Et al.[14]también llegarela una conclusión similar en un estudio en el que el pez cebra se inyecintraperitonealmente celVCV.

Krishnan Et al.[15]mostrarelque el − -glucan puede aliviar la respuesta pro-inflamatoria de los macrófagos en Epinephelus septemfasciatus, mejorar la respuesta inmune de los peces contra el virus de la necrosis nervi(NNV), y mejorar significativamente la tasa de supervivencia de los peces infectados. La adición de -glucan a la alimentación aumentó significativamente los niveles de expresión de factores antibacterianos tales como Alf-1, lisozamina y crust- 1 en el cangrejo nadador Portunus trituberculatus, mejorando su capacidad para resistir infecciones ciliadas [16]; La adición de levadura − -glucan puede aumentar significativamente la actividad de lisozamina sérica y los niveles de IgM, CR3 y CR4 en rodabal(Scophthalmus maximus), y reducir significativamente los niveles de expresión génica de citocinas inflamatorias en la lámina propia y submucosa [17]. Actividad de lisozima y niveles de IgM, CR3 y CR4, y redujo significativamente los niveles de expresión génica de citocinas inflamatorias en la lámina propia y submucosa[17]. Deltametrina puede causar una regulación negativa de los genes relacionados celel sistema inmune IL-1β e IL-8 en la tilapia del Nilo, y una regulación positiva de los factores pro-inflamatorios interferón γ (IFN-γ), proteína de choque térmico 70 (HSP70), y caspasa 3 (CASP3). Los niveles de expresión fuerelelevados, pero la suplementación cel− -glucan podría aliviar la respuesta de estrés causada por deltametrina, restaurando la expresión de genes antioxidantes e inmuna a niveles normales [17]. La adición de levadura − -glucan a la alimentación puede aumentar significativamente la actividad de la fosfatasa ácida y la fosfatasa alcalina en los intestinos de la carpa Pengze crucian, mejorando significativamente la respuesta inmune Intestinal intestinal[18]; Aumentar la expresión de mRNunde TLRy HSP70 en el hepatopáncreas y los intestinos de camarvanamei, y reducir la expresión de TNF- - y Dectin-3 [19].

Se encontró que la alimentación de la trucha marrón caspi(El Salmotrutta caspius)celun alimento complementcelbrewer's la levadura beta-glucan puede aumentar significativamente la actividad de la lisozima plasmática y los niveles de IgMy reducir la expresión de genes relacionados cella inflamación [10]; La adición de beta-glucan de levadura a la alimentación de tortugas juveniles de arena amarilla puede aumentar significativamente la fosfatasa ácida y la actividad de la fosfatasa alcalina, mejorando así la función inmunno específica [20]; Añadiendo 1. 0% − -glucan puede aumentar significativamente los niveles de expresión de TNF- - e INF- - en besugo (Tor putitora), pero no tiene un efecto significativo sobre el nivel de expresión de IL-10 [21]. La IL-6 y el receptor 1 tipo Toll (proteína adaptdel dominio receptor de interleucina 1 (TIRAP) media las vías de señalización JAK-STAT y TLR, que pueden regular el cuerpo#39;s respuesta inmune. La adición de − -glucan a la alimentación puede aumentar significativamente los niveles de expresión de los genes IL-6 y TIRAP en el mero perla (Epinephelus lanceolatus→ Epinephelus fuscoguttatus β), mejorando así el body's respuesta inmune [22]. Niveles de expresión, mejorando así el body's respuesta inmune [22].

Los iones de cobre pueden causar una significativa regulación positiva de factores pro-inflamatorios como TNF- -, IL-1 - y IL-6 en células +B. El Beta-glucan puede inhibir la respuesta pro-inflamatoria causada por los iones de cobre. En el cultivo de beta-glucano IgM+ células B, los niveles de expresión de las proteínas de la cadena alfa y cadena − relacionadas celel complejo receptor del antígeno de células B(BCR) (CD79a y CD79b) se incrementsignificativamente, lo que indica que el -glucan también puede regular la inmunidad a través de la proteína BCR en las células BIgM+ [23]. Los estudios han encontrado que cantidades moderadas de -1,3-glucan en el alimento puede aumentar la actividad fagocíde las células sanguíneas del cangrejo de pantrojo (Cherax quadricarinatus). El momento y la dosis de la adición selfactores clave que afectan la respuesta inmune del cuerpo [24]; La respuesta inmune inducida por la inyección intraperitoneal de -glucan en pez cebra es muy corta, generalmente 2-14 días [13]. KKoch Et al.[25]añadi± -glucan al alimento de tilapia durante 15 a 45 días, lo que aumentó la respuesta inmune no específica y la resistencia a la enfermedad de la tilapia, y no causó inmunosupresión. Las razones específicas de esto deben ser exploradas más a fondo.

2.2 regulación del metabolismo lipídico

El Beta-glucan puede reducir la concentración de glucosa, colesterol total y triglicen la sangre [26]. Hay dos mecanismos posibles por los que beta-glucan afecta el metabolismo de los lípidos en el cuerpo: (1) la flora Intestinal intestinalfermenta el polisacárido para producir ácidos grasos de cadena corta, que selcapturados por la vena porta y transportados al hígado, reduciendo así la producción de lípidos; (2) el beta-glucano se une a los ácidos biliares en el intestino, causando un aumento en la viscointestinal y por lo tanto interfiriendo cella absorción de lípidos [27]. Lopes Et al.[28]agregó brewer's levadura beta-glucan para la alimentación de la tilapia de vientre graso juvenil (Piaractus mesopotamicus), que reduce los niveles plasplasde triglicéridos y lípidos en el hígado, músculos y vísceras.

Zhao Et al.[29]agregdiferentes cantidades de -1,3-glucano al alimento de camarón Vanamei y encontraron que la adición de 250 mg/kg aumentó significativamente las concentraciones séride colesterol. Yang Et al.[30]encontraron que la levadura − glucan puede reducir significativamente las concentraciones de triglicséricos, colesterol total, colesterol de lipoproteínas de alta densidad y colesterol de lipoproteínas de baja densidad en la carpa de hierba (ctenopharamydon Idella) cuando se agrega al alimento básico de carpa de hierba. Cao Et al.[18]llevaron a cabo un experimento de 70 días mediante la adición de levadura − -glucano a la alimentación de carpa de Pengze (Carassius Auratus.Var.Pengze). Los resultados mostraron que la adición de levadura − glucan puede reducir el colesterol total y los niveles de lipoproteínas de alta y baja densidad. Senembargo, otros estudios han encontrado que la adición de − -glucan no tiene un efecto significativo sobre el colesterol. Por ejemplo, la alimentación de -1,3-glucano a la dieta basal de la lubmarina japonesa (Lateolabrax japonicus) durante 60 días no tuvo un efecto significativo sobre el colesterol sérico en la lubmarina japonesa [31]; Y la adición de − -glucan al agua no tuvo efecto significativo sobre la concentración de colesterol sérico de tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus) [32]. No fish (Oreochromis niloticus) no tuvo efecto significativo sobre la concentración de colesterol sérico [32]. Dadas las diferencias en los efectos del − -glucan de diferentes fuentes sobre el metabolismo lipídico en animales acuáticos, y los relativamente pocos estudios sobre los mecanismos metabólicos del − -glucan en animales acuáticos, es necesario continuar llevando a cabo investigaciones relevantes para revelar el mecanismo por el cual el − -glucan afecta el metabolismo lipídico en animales acuáticos.

2.3 efecto antioxidante

Bajo circunstancias normales, los radicales libres son un subproducto del metabolismo, y existe un equilibrio dinámico entre la producción y el aclar. Este equilibrio dinámico depende principalmente del sistema antioxidante. Si el nivel de un cierto tipo de radical libre excede el límite, el body's homeostasis será interrumpido, y la inflamación excesiva agotará los antioxidantes y conducir a un daño oxidativo [23]. Estudios han demostrado que − -glucan puede mejorar el cuerpo#39;s capacidad antioxidante mediante el aumento de la actividad de enzimas antioxidantes como la catalasa (CAT), glutatión peroxid(GSH-Px), y la superóxido dismutasa (SOD), así como la actividad de eliminación de radicales libres y aniones superóxido. Además, − -glucan puede mejorar el body's capacidad antioxidante mediante la activación de la vía de señalización Nrf2 y upreregulación de la expresión de genes antioxidantes [33-34]. Yang Et al.[30] encontraron que la adición de levadura − -glucan al alimento con bajo contenido de harina de pescado y la alimentación con carpa de hierba produjo concentraciones altas de parámetros antioxidantes en el suero y el tejido testicular, confirmando que la levadura − -glucan puede producir propiedades antioxidantes. La vía de señalización Nr f2-Keap1 juega un papel crítico en la regulación de las respuestas antioxidantes, y la levadura − -glucan puede activar la vía de señalización Nrf2 y upreregular la expresión de genes antioxidantes para mejorar las respuestas antioxidantes.

Con el aumento de la cantidad de − -glucan añadido a la alimentación, el contenido de malondialdehído (MDA) en el hígado de salmón Atlántico joven disminuyó gradualmente, mientras que los niveles de actividad de GSH, GSH-Px y SODmostraron una tendencia al aumento antes de disminuir, lo que indica que la adición de una cantidad adecuada de − -glucan a la alimentación puede aumentar la capacidad antioxidante del hígado de salmón Atlántico joven, pero la excesiva capacidad antioxidante mostró una tendencia a la baja [35]. Wang Yonghong et al. [36] inyec0,1 mL de − -glucan en una concentración de 0 a 5 mg/kg de peso corporal en la cavidad abdominal de la corvina amarilla juvenil (Larimichthys crocea). 1mL, bajo condiciones normales de oxigen, − -glucan no tuvo efecto sobre el contenido de MDundel hígado de la joven croaker amarilla grande, pero bajo estrés hipóxico, − -glucan podría aumentar significativamente los niveles de expresión de Cu/Zn-SOD, Mon-SOD, CAT, GRx1B)Nrf2 y la actividad de enzimas antioxidantes, y reducir el contenido de MDA, reduciendo así el daño oxidativo causado por el estrés hipóxico en la joven croaker amarilla.

Zhu et al. [37]encontraron que la adición de -1,3-glucan al alimento mejoró significativamente las actividades de la fenoloxidasa (PO), SOD y GSH-Px, y redujo el contenido de MDunen los "mudskippers", lo que indica que la adición de -1,3-glucan mejoró significativamente la capacidad antioxidante de los "mudskippers". − -Glucan puede mejorar la capacidad antioxidante de la tilapia del Nilo mediante la reducción del estrés subagudo deltametrina. Tilapia del Nilo#39;s capacidad antioxidante puede ser reforzada por -glucan, que puede reducir los niveles de expresión de HSP70 y CASP3 genes [17]. En resumen, el − -glucan puede mejorar la capacidad antioxidante de los animales, pero la adición excesiva puede debilitarlo. Por lo tanto, la cantidad de − -glucan añadido debe ser ajustada en la práctica de producción de acuerdo a las diferentes etapas de crecimiento de diferentes cuerpos animales o diferentes ambientes de cría, con el fende evitar efectos negativos sobre el crecimiento animal y pérdidas económicas.

2.4 efecto antiestrés

El estrés ambiental a menudo puede ser fatal para los animales acuáticos. El inmunoestimulante β-glucan puede mejorar la capacidad de los peces para resistir ambientes difíciles [38]. Los niveles sanguíneos de cortisoly glucosa pueden reflejar el estado de salud de los peces en respuesta al estrés ambiental, y la reducción en los niveles sanguíneos de cortisol y glucosa en la tilapia del Nilo se relaciona con la capacidad de − -glucan para mejorar su resistencia al estrés [39]. Usando tilapia del Nilo bajo estrés por deltametrina subaguda durante 15 y 30 días, se encontró que la tilapia del Nilo alimentada con − -glucan tenía niveles significativamente más bajos de cortisol y glucosa en sangre, mientras que el grupo control tenía niveles significativamente más altos de cortisol y glucosa en sangre [17]. Souza et al. [32]encontraron que la administración de 0,1 mg/L − -glucano en agua podría mejorar la tolerancia de la tilapia a la hipoxia y aumentar las tasas de supervivencia, mientras que también regula los niveles de glucosa en sangre.

HSP70 y HSP90α son indicadores importantes para la detección de estrés térmico. Cuando 1% − -glucan y 0.05% bacterias de ácido lácmuertas por calor (HK-LP) fueron añadia la alimentación de lochasde barro, se encontró que los niveles de expresión de HSP70 y HSP90 β en el hígado se incrementsignificativamente [40]. Zhao Hong 0.05% mató calor matbacterias de ácido lác(HK-LP) se encontró que aumenta significativamente los niveles de expresión de HSP70 y HSP90α en el hígado [40]. Zhao Hongxia et al. [41]fed0. 1% − -1,3-glucan fue alimentado a intervalos de 14 días, lo que puede mejorar la resistencia del camarón Vanamei al nitrito. Wu Chunyu et al. [31]usaron pienso con diferente contenido de − -glucan de brewer's para alimentar a la lubdurante 60 días, y luego utilizó clorde amonio para llevar a cabo una prueba de estrés de nitrógeno amoníaco. Los resultados mostraron que la tasa de mortalidad de los 400 y 600 mg/kg brewer's los grupos de adición de levadura − -glucan fueron significativamente menores que los del grupo senadición. Se utilizó una combinación de modelos de parábola y línea rota para obtener 41 5.10 mg/kg fue la cantidad adecuada unagregar, indicando que la adición de brewer's levadura − -glucan a la alimentación puede aliviar el daño causado por el estrés de nitrógeno amoniaco a la luby mejorar su capacidad para resistir el estrés de nitrógeno amoniaco. Por lo tanto, el − -glucan, como aditivo alimenticio, puede aliviar la respuesta de estrés de diferentes peces y camarones bajo condiciones específicas.

3 aplicación de − -glucan en acuicultura

3.1 efecto sobre el crecimiento de los animales acuáticos

Estudios han demostrado que la adición de − -glucan a la alimentación puede promover el crecimiento de los animales acuáticos. Los cambios en el crecimiento están estrechamente relacionados con los cambios en las enzimas digestivas. La actividad de las enzimas digestivas refleja directamente el grado de digestión y utilización del alimento. Una mayor actividad indica que el alimento es más utilizado y es más beneficioso para el crecimiento animal [19]. Wang Wanliang et al. [35]encontraron que la alimentación de salmón joven del Atlántico (Salmo trutta) con alimentos que contienen diferentes cantidades de − -glucan en un tanque de vidrio circular a una temperatura del agua de 13-14 β Ctenía un efecto positivo sobre el crecimiento. Senembargo, a medida que la cantidad de − -glucan añadido aumentaba gradualmente, la tasa de crecimiento específico y la actividad de la enzima digestiva del salmón joven del Atlántico primero aumentaba y luego disminuía, lo que indica que el efecto del − -glucan en el rendimiento de crecimiento del salmón joven Yalong puede estar relacionado con la cantidad añadi, y la fuerza de la actividad de la enzima digestiva puede ser el principal factor que afecta el rendimiento de crecimiento del salmón joven Yalong. La adición de 0,2% a 0,4% β-glucan a la alimentación puede aumentar significativamente las actividades de proteasa y amilasa en el intestino del camarón Vanamei, y el rendimiento de crecimiento se mejora significativamente. Se infique la mejora del rendimiento de crecimiento del camarón Vanamei puede estar estrechamente relacionado con el aumento de la actividad enzimática digestiva [19].

Zhao et al. [29] encontraron que en un experimento de cultivo a largo plazo con Penaeus vannameidurante 84 días, una dosis baja de − -glucano (250 mg/kg) puede promover el rendimiento de crecimiento principalmente como fuente de energía, mientras que una dosis alta de − -glucano (500 mg/kg) puede estimular la respuesta inmune. Divya et al. [42]añadisaccharomyces cerevisiae) -glucan aumentó significativamente el peso corporal final y mejoró el rendimiento de crecimiento de tilapia de Mozambique (Oreochromis mossambicus) cultivada bajo estrés de amoníaco. La razón puede ser que el − -glucan mejora la inmunidad celular, la inmunidad humoral y la respuesta antioxidante de la tilapia de Mozambique, reduce el consumo de nutrientes para la respuesta inmune, y por lo tanto obtiene más nutrientes para satisfacer las necesidades de crecimiento [43-44]. La trucha arcoiris cultivada en piscinas de hormigón a 11-13 ℃ y alimentada con una dieta suplementcon una cantidad adecuada de -glucan (una mezcla de -1,3-glucan y -1,6-glucan) puede aumentar significativamente su tasa de ganancia de peso, la tasa de crecimiento específico, y aumentar la plumness del cuerpo del pez [4 5-46]. − -glucan puede promover el metabolismo de nutrientes como la grasa y las proteínas mediante la alteración de la flora intestinal de Loach (Misgurnus anguillicaudatus), mejorando así la absorción de nutrientes y promoviendo el crecimiento animal [40].

Senembargo, algunos estudios han demostrado que el − -glucan no tiene ningún efecto promotor en el crecimiento de los animales acuáticos. Liang Zhi-ling et al. [20]añadilevadura − -glucan a la alimentación de tortugas juveniles de hociamarillo de caparazón blando (Truogx sinensis), y encontró que no tenía un efecto significativo en los tejidos, órganos o crecimiento. Gu et al. [9] alimentaron rodabalque contenía levadura → -glucan, y encontraron que no tenía un efecto significativo sobre el rendimiento de crecimiento o la utilización del alimento. Li Yong-juan et al. [47]alimentados con juveniles amarillos de Pelteobagrus fulvidraco no mostraron un efecto significativo de promoción del crecimiento. La razón puede ser que feeding β-glucan causa el animal acuático#39;s el cuerpo estar en un estado de activación inmune a largo plazo, y el cuerpo redistribuye nutrientes, con el resultado final no siendo un efecto significativo sobre el crecimiento de los animales acuáticos [35]. Por lo tanto, la aplicación de − -glucano en la producción acuícola debe tener en cuenta diversos factores como su origen, la cantidad añadida, el tipo de animal acuático y el medio de cría.

3.2 efecto sobre la salud intestinal de los animales acuáticos

La microecología intestinal de los peces es susceptible a cambios ambientales externos, invasión de bacterias nocivas y otros factores, que pueden conducir a la interrupción de la homeostasis intestinal y afectar a la salud de los peces. La adición de una cantidad adecuada de − -glucan a la alimentación puede mejorar la actividad de las enzimas digestivas, mejorar la capacidad digestiva y de absorción del intestino, y mejorar la eficiencia de utilización del alimento [48]. Los estudios han encontrado que la adición de una cantidad adecuada de -1,3-glucan a la alimentación puede aumentar significativamente la actividad de la loach's enzimas digestivas intestinales, pero altas dosis de -1,3-glucan no continúan aumentando la actividad de las enzimas digestivas [37]; La alimentación de salmón Yalong con alimento que contenga β -glucano puede aumentar la actividad de las enzimas digestivas intestinales y mejorar la capacidad de digestión intestinal [35]; ; Alimentación Penzer cruciancarpafer-glucan piensose encontró que, en comparación con el grupo de control, la adición de levadura -glucan puede aumentar significativamente la altura de los pliegos intestinales y microvellosi, aumentar la actividad de amilasa y tripsina, y mejorar significativamente la digestión intestinal [18]; La adición de 0,02% de levadura → -glucan a la alimentación puede aumentar significativamente la abundancia de Bacillus Bacillus y Bacillus subtilis en el intestino, aumentando significativamente la actividad de amilasa intestinal y proteasa.

Esto puede estar relacionado con la capacidad de Bacillus para producir proteasa, amilasa y lipasa en el intestino. Añadiendo 0. 0,04% β-glucan aumentó significativamente la abundancia de Bacillus y Chitinibacterium, mientras que la abundancia de Citrobacter, microbacteria y Mycobacterium se redujo significativamente [19]; La alimentación de trucha arco iris con -1,3-glucan incrementó significativamente el número de lactobacilos en el intestino, mejorando la salud intestinal [45]. Souza et al. [32] aplicβ -glucan al agua de cultivo de tilapia del Nilo, y encontraron que el β-glucan podría aumentar significativamente la abundancia de phyla Firmicutes, fusobacteriy Proteobacteria bajo estrés hipoxico.

La sustitución de harina de pescado por harina de soja puede tener un impacto negativo en los intestinos del salmón del Atlántico (Salmo salar) y el salmón alcau(Oncorhynchus tshawytscha). Después de alimentarse con una dieta suplementada con levadura → -glucan, la altura de los pliegues de la mucosa intestinal del rodbot se incrementó significativamente, la fusión de los pliegues de la mucosa se redujo, y disminuyó la anchura de la lámina propia y la infiltrde leucocitos [9,49]; El − -glucan alivia los efectos negativos de la Enteritis.en animales acuáticos al promover la expresión de neurotransmisores como la acetilcolinesterasa, la serotony la sustancia P, reduciendo así el daño mecánico a los intestinos [50]. Ji et al. [46]estudiaron el efecto de la levadura − -glucan en la inflamación intestinal inducida por el ácido trinitrobencensulfónico (TNB) en la Enteritis.de trucha arco iris, y encontraron que la levadura − -glucan puede reducir la enteritis indupor TNBS, reducir la tasa de mortalidad de trucha arco iris, y disminuir el porcentaje de pérdida de peso durante la enteritis de trucha arco iris. Por lo tanto, en el futuro, deberán realizarse experimentos sobre los efectos del − -glucan en la salud intestinal de diferentes animales acuáticos, y la dosificación y el ciclo de adición del − -glucan deberán ajustarse de acuerdo con las características de absorción intestinal y la estructura y abundancia de la flora de diferentes animales acuáticos.

3.3 efecto de la suplementación combinada de − -glucan en animales acuáticos

Los estudios han demostrado que el uso combinado de múltiples estimulantes inmunes tiene un mejor efecto inmunitario que la adición de un solo tipo de estimulante inmunitario [51]. La adición combinada de múltiples sustancias se basa principalmente en la estabilidad, adaptabilidad, seguridad y efecto sinérgico de varios ingredientes para determinar el tipo y la proporción de sustancias añadidas [52].

Miao et al. [53]estudiaron el efecto del − -glucano (Saccharomyces cerevisiae− -glucan y Torulopsis ferment lysate) en combinación con una cepa probióde Pediococcus acidilactici PA-GY2 aislado del intestino de Macrobrachium rosenbergii (camarcamarrosenberg). El uso combinado del PA-GY2 y brewer's levadura − -glucan puede mejorar significativamente el rendimiento de crecimiento y la actividad de la lipasa de Macrobrachium rosenbergii. La adición combinada de PA-GY2, brewer's levadura − -glucan y levadura − -glucan reduce significativamente el coeficiente de alimentación y mejora el rendimiento de crecimiento. El uso combinado del PA-GY2 y brewer's levadura → -glucan o levadura → -glucan puede aumentar la expresión inmune y reducir la mortalidad.

Jami et al. [10]agregó brewer's levadura IgM, lisozima, complemento y complemento sero-sustituido (ACH50) actividad a la dieta basal de trucha marrón Caspiopara mejorar la inmunidad no específica. La adición individual y combinada de estimulantes inmunpuede reducir o aumentar la transcripción de genes relacionados con la inflamación (TNF- -, IL-1 - e IL-8). Brewer&#El glucan solo o en combinación con Lactobacillus plantarum(Lp) aumentó significativamente la expresión del ARNm de IL-8, pero la combinación de -glucan, manan-oligosacárido (MOS) y Lp redujo significativamente la expresión del ARNm de IL-8. Los estudios han encontrado que los MOSpueden mejorar el rendimiento de crecimiento al aumentar el peso corporal, la eficiencia de conversión del alimento, mejorar la estructura intestinal y regular positivamente la flora intestinal [54]; Lp puede promover la absorción de − -glucan, mejorar la actividad de las enzimas del tracto digestivo, el rendimiento de crecimiento y la eficiencia de utilización del alimento de los animales acuáticos, inhibir la adhesión y el crecimiento de bacterias patógenas, mejorar el nivel de las enzimas del tracto digestivo, la inmunidad, y mejorar el host's resistencia a la enfermedad y tasa de supervivencia [55-56].

La adición combinada de -glucan y MOS a la alimentación de carpa (CyprinusCarpio) puede mejorar significativamente la tasa de crecimiento, la salud intestinal y la inmunidad de la carpa [57]; La adición combinada de − -glucan y Lactobacillus inactivado por calor (HK-LP) a la alimentación reduce significativamente el coeficiente de alimentación y mejora el rendimiento de crecimiento de Loach jóvenes, entre los cuales el alimento el efecto más significativo se logró mediante la adición de 1% − -glucan y 1% HK-LP a la alimentación [40]; Los sinbióticos (− -1,3-glucano combinado con proteínas y bacilicheniformis) pueden mejorar el rendimiento de crecimiento al estimular la secreción de enzimas extracelulares por la flora intestinal de los peces de Mozambique y aumentar la absorción intestinal. También puede mejorar la capacidad antioxidante al aumentar la actividad del oxígeno activo y estimular la liberación de enzimas antioxidantes para mejorar la capacidad antioxidante [58]; Los sinbióticos (Saccharomyces cerevisiae, manan-oligosacáridos y β -glucano) incrementaron la tasa de supervivencia y la capacidad antioxidante de tilapia del Nilo infectada con Pseudomonas aeruginosa, posiblemente debido a que los manmano-oligosacáride en los sinbióticos pueden adherirse a ciertas bacterias Gram, previniinfecciones y mejorando así el fish's inmunidad y defensa contra enfermedades infecciosas [59].

3.4 los efectos de los diferentes métodos de alimentación de− -glucan en animales acuáticos

Los estudios han demostrado que la alimentación a corto plazo (< 30d) de − -glucan puede mejorar la inmunidad no específica, y la alimentación a largo plazo de − -glucan puede tener efectos inmunosupresores en animales acuáticos [14,60]. Li Fudong et al. [61] informaron que en un acuario con temperatura controlada a (25 − 5) ± C, la alimentación continua a largo plazo (60d) de alimento suplementcon 0,15% y 0,50% de glucan redujo significativamente las actividades de lisozima y fosfatasa ácida y la tasa de supervivencia de la carpa, senefecto significativo sobre el rendimiento de crecimiento.

Koch et al. [25] encontraron que la alimentación de tilapia con alimento suplementcon 1% − -glucan durante 60 días en un acuario con temperatura controlada a 26 β C promovió significativamente el crecimiento y mejoró la inmunidad. Se recomienda considerar la alimentación a largo plazo con − -glu. Zhao Hongxia et al. [41] agregó 0. 1% − -1,3-glucan continua o intermitentemente alimentado a camarón Vanamei, los resultados mostraron que si el intervalo o alimentación continua de − -1,3-glucan no tuvo un efecto significativo en el rendimiento de crecimiento de camarvanamei, pero la alimentación intermitente aumentó significativamente la actividad de la lipasa en camarvanamei, promovió el metabolismo de la energía y la proteína en camarón, y 14 días de alimentación intermitente de − -1,3-glucan redujo significativamente la mortalidad por estrés de nitrógeno nitrito de camarvanamei. El 3-glucan redujo significativamente la tasa de mortalidad del camarón Vannamei bajo estrés de nitrógeno nitrito.

Li Yongjuan et al. [47] diseñaron un grupo de alimentación basal, añadi200, 600 y 1000 mg/kg de levadura → -glucan a tres grupos de alimentación continua y tres grupos de alimentación intermitente para estudiar el efecto de la levadura → -glucan en los indicadores fisiológicos de los jóvenes de la corvina amarilla. Los resultados mostraron que el grupo de alimentación continua tuvo una tasa de ganancia de peso significativamente mayor que el grupo de alimentación intermitente correspondiente. Además, ni la alimentación intermitente ni la continua tuvieron un efecto significativo sobre los indicadores bioquímicos séricos, la capacidad antiinfección yel rendimiento de crecimiento de los jóvenes de la raza. En resumen, si la alimentación intermitente puede tener un efecto positivo en los animales acuáticos puede estar relacionado con la fuente de − -glucano, el tipo de animal de cultivo, el ciclo de cultivo, el medio ambiente de cultivo, la fórmula y la cantidad añadida, etc.

4 resumen

unmedida que la industria acuícola se desarrolla, varios problemas en el proceso de cría se han vuelto gradualmente más prominentes. La contaminación ambiental, el uso indiscriminde antibióticos y las infecciones de peces han comenzado a amenazar la salud de los animales acuáticos y los seres humanos.

El inmunoestimulante β-glucan se ha utilizado en una variedad de campos, y un gran número de estudios han demostrado sus funciones de promover el crecimiento, mejorar la inmunidad, resistir la oxid, y resistir el estrés. Como aditivo verde en acuicultura, el β-glucan es uno de los aditivos acuafeed con mayor potencial de desarrollo en el futuro. Senembargo, todavía hay muchos problemas que necesitan ser resueltos en su aplicación, y la investigación todavía es necesaria en las siguientes áreas: * hay muchas especies de acuicultura en China, y se necesita más investigación para evaluar la dosis adecuada y la puntualidad de − -glucan en diferentes animales acuáticos. ② Chinaes un país vasto, y los requisitos apropiados de los animales acuáticos en diferentes ambientes de cría, modos de cría, temporadas de cría y etapas de cría los requisitos apropiados para el β-glucan todavía necesitan ser estudiados en detalle; ■ los requisitos adecuados para el ③ -glucan deben evaluarse de acuerdo con las condiciones reales de producción, basándose en diferentes criterios de evaluación tales como rendimiento óptimo de crecimiento, función intestinal, calidad del producto, resistencia a enfermedades y resistencia al estrés; ■ cuando se utilicen múltiples aditivos combinados en los piensos, deberá estudiarse en profundidad si existe sinergia o antagonismo entre el − -glucan y otros aditivos, así como el impacto del metabolismo de los nutrientes en el medio acuático; Las vías de señales por las cuales el glucan afecta las funciones fisiológicas y las funciones metabólicas de los animales acuáticos aún necesitan ser exploradas más a fondo. La reacción, así como el impacto del metabolismo nutricional en el medio acuático, etc., todavía requieren una investigación en profundidad; (5) las vías de señales por las cuales el -glucan afecta las funciones fisiológicas y las funciones metabólicas de los animales acuáticos aún no han sido exploradas.

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