¿Cuál es el método de ensayo para − Glucan?

El beta-glucano es un polisacárido senalmidónCompuesade D-glucosa unida por enlaces beta-glucosídicos y se encuentra ampliamente en la naturaleza. Se puede dividir en − -1,3-glucan, − -1,3-1,6-glucany − -1,3-1,4-glucan de acuerdo celsu estructura. Sus principales fuentes selcereales, bacterias y hongos [1].

Entre las muchas fuentes, cereal − -glucanse ha convertido en el foco de investigación debido a su abundante, segura y fiable fuente y excelentes propiedades físicoquímicas. Cereal − -glucantiene una variedad de funciones y efectos fisiológicos. Se puede regular los niveles de glucosa en la sangre y prevenir la diabetes tipo 2 [2-4]; Reducir los niveles de colesterol sérico y prevenir enfermedades cardiovasculares [5-6]; Equilibrar la flora intestinal y prevenir el cáncer de colel[7-9]; Regular la presión arterial [10] y mejorar la actividad de las células inmun[11]. Además, el β-glucan de cereal también se puede utilizar como aditivo en la producción de productos lácteos, helados y otros alimentos para mejorar la calidad sensorial de estos productos [12-13].

Actualmente, el método de detección del glucan de cereal se basa principalmente en métodos enzim[14]. Además, los investigadores también han desarrollado métodos de fluorescencia [15] y métodos de visco[16] basados en las características de − -glucan. Los diferentes métodos de detección difieren en cuanaal coste, la precisión de los resultados y la eficacia de los ensayos, por lo que seladecuados para diferentes productos de cereales o requisitos de ensayo.

Como una fibra dietimportante, la detección de -glucan es de gran importancia en el mejoramiento, procesamienay desarrollo de productos de cereales, especialmente cebada y avena [17-18]. El desarrollo de un método de detección económico, rápido, preciso y de alto rendimiento se ha convertido en una cuestión apremipara las industrias de avena y cebada. Este artículo revisa los principios, métodos y estándares actuales para la detección de − -glucan en cereales, con el objetivo de proporcionar una referencia para detectar con precisión el contenido de − -glucan en los cereales y desarrollar métodos para satisfacer las necesidades específicas de detección.

1 estructura de cereal − -glucano

Graenβ-glucan es ampliamente disponible, alto en contenido, y tiene un alto peso molecular. Es una excelente fibra dietsolubleen agua [19]. Como un componente de las paredes celulares de las plantas, el − -glucan se puede combinar con colorantes fluorescentes para producir un color, por lo que su distribución en los granos de cereales se puede observar utilizando técnicas de tinfluoresc[20-22]. La avena y la cebada son las fuentes más comunes de cereal − -glucanos, mientras que el trigo y el centeno también contienen algunos − -glucanos [23]. A diferencia de los − -glucanos bacterianos y fún, los − -glucanos de cereales son polisacáridos lineales con una mezcla de enlaces − -1,3 y − -1,4. Los enlaces − -1,4 conectan los monómeros D-glucosa para formar una unidad de cellobiose, mientras que los enlaces − -1,3 conectan estas unidades de cellobiose para formar − -glucano. La presencia de enlaces − 1,3 puede prevenir eficazmente que las moléculas se apilen estrechamente y darles un cierto grado de solubilidad en agua. Por lo tanto, factores tales como la relación de enlaces − -1,3 a − -1,4 y la relación de cellotriosa a cellotetraafectarán las propiedades físicas y químicas del polisacaride& − -glucan#39;spropiedades físicas y químicas [23-24].

El contenido y la estructura del − -glucano en los cereales pueden variar dependiendo del tipo genético y las condiciones ambientales (tabla 1). La cebada y la avena tienen un alto contenido de − -glucano, representando 2,2% a 8,8% y 1,73% a 5,70% del peso seco del grano, respectivamente, mientras que el trigo y el centeno tienen un contenido de − -glucano de 0,38% a 0,64% y 1,4% a 2,6%, respectivamente [25-26]. Además, hay ciertas diferencias en la relación de trisacáridos de fibra intra-molecular y tetrasacáridos de fibra, la relación de enlaces − 1,3 a enlaces − 1,4, y el peso molecular de − -glucanos en granos. Por ejemplo, el peso molecular de OAT − -glucan es mayor, en 180-850 kDa [27], mientras que el peso molecular de Rye − -glucan es de sólo 21 kDa [28].

Estas diferencias se deben principalmente a los diferentes genotipos y ambientes de crecimiento de los granos. Las diferencias estructurales en − -glucan pueden darle diferentes propiedades físicas y químicas. Por ejemplo, la relación de enlaces − 1,3 y − 1,4 está relacionada con la solubilidad en agua, mientras que el peso molecular de − -glucan está relacionado con la viscode su solución. La solución A − -glucan tiene una alta viscoy es un fluido no newtoni. Cuanto mayor es la concentración y el peso molecular de − -glucan, mayor es la viscode la solución [29]. El Beta-glucan también puede formar geles. Los factores que controlan su comportamiento de gelación son actualmente desconocidos, pero generalmente se cree que la tasa de gelación está relacionada con el peso molecular del beta-glucano. Además, el beta-glucan también puede absorber agua y hincharse. Los grupos hidroxilo en el beta-glucan pueden formar enlaces de hidrógeno con moléculas de agua

. Al mismo tiempo, los trisacáridos internos de fibra o tetrasacáridos de fibra pueden ser Unidos por enlaces − -1,3 para formar sitios de Unión, por lo tanto uniendo efectivamente el agua a ellos [30].

2. Principio de ensayo de − -glucan en cereales

Actualmente, existen varios métodos para probar el contenido de − -glucan de los cereales. De acuerdo con las propiedades de − -glucan, los principios de estos métodos se pueden resumir en cuatro categorías: hidrolizando − -glucan en monómeros de glucosa; Unión específica de − -glucano a un tinte; Usando β-glucan's propiedades físicas propias; Yotros.

2.1 hidrolizada en monómeros de glucosa

Como se mencionó anteriormente, OAT − -glucano es un polisacárido lineal compuesto de − -1,3 y − -1,4 enlaces de D-glucosa. No es fácil cuantificar directamente − -glucan. Senembargo, es más factible cuantificar − -glucan hidrolizando − -glucan en monómeros de D-glucosa y luego medir el contenido de monómeros de glucosa. En general, los métodos de hidrólibiológica y química pueden ser utilizados para hidrolizar − -glucan. El método de hidrólisis biológica implica el uso de enzimas específicas y altamente específicas para romper los enlaces − -1,3 y − -1,4, degradando así el − -glucano en monómeros de glucosa [14]. El método químico implica el uso de una solución ácida concentrada a una temperatura específica para escindir el − -glucano en monómeros de glucosa [33-34]. Los monómeros de glucosa se pueden convertir en sustancias de color utilizando el método oxid, y la absorbancia de la sustancia en una longitud de onda de 510 nm es directamente proporcional al contenido de glucosa. Además, el contenido de monómeros de glucosa se puede detectar utilizando la tecnología de cromatolíquida de alto rendimiento (HPLC). Finalmente, el contenido de − -glucan puede ser cuantitdeterminado por el contenido de glucosa.

Unión con colorantes

El Beta-glucan puede unirse a sustancias específicas, cambiando el color o la intensidad de fluorescdel complejo. Este es otro principio fundamental para la detección cuantitativa del beta-glucano de cereales. Por ejemplo, si el − -glucan se une al colorrojo Congo, el mecanismo de Unión puede ser debido a la interacción hidrofóbica, y la absorbancia de la solución de Unión cambia. La cantidad de − -glucan puede ser determinada midiendo el cambio de absorbancia en una longitud de onda de 550 nm [35]. Además, − -glucan también puede unirse al agente blanquefluorescfluoresccalcofluor, y la cantidad de − -glucan se puede detectar cuantitmidiendo el cambio en la intensidad de la fluorescencia del complejo [36]. El mecanismo vinculante específico no está claro actualmente.

2.3 propiedades físicas de − -glucan

− -glucan puede aumentar la viscode una solución, y también tiene fuertes propiedades de absorción de agua. Estas propiedades físicas pueden usarse para detectar el contenido de − -glucan en los cereales. Para un peso molecular dado de − -glucan, la viscode la solución es directamente proporcional a la concentración, por lo que el contenido de − -glucan puede ser detectado midiendo la viscode la solución [16]. Vale la pena señalar que el peso molecular de − -glucan también afecta a la viscode la solución. Cuanto mayor es el peso molecular, mayor es la visco. Por lo tanto, cuando se utiliza este principio para la detección, también se debe prestar atención al efecto del peso molecular. La fuerte absorción de agua de − -glucan puede aumentar la retención de agua del sistema cereal, es decir, cuanto mayor sea el contenido de − -glucan, mayor será la retención de agua del sistema. Sobre la base de este principio, Niu et al. [37] desarrollaron un nuevo método para la detección de OAT − -glucan usando la capacidad de retención de disolvente.

otros

Además de los principios anteriores, también hay métodos espectroscópicos y ensayos de inmunoabsorción de enlace enzimpara la detección de − -glucan. La espectroscopia utiliza espectroscopia de infrarrojo cercano, que se basa en el hecho de que ciertos enlaces químicos en − -glucan producirán absorción vibracional bajo luz infrarroja cercana, de acuerdo con Lambert-Beer&#Ley 39;s, es decir, la intensidad del pico de absorción es proporcional a la concentración de la sustancia a medir [38]. El principio del ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas es desarrollar anticuerpos monoclonespecíficos que se unen específicamente a − -glucan como sustr, y detectar cuantitel contenido de − -glucan a través de una reacción colorimétrica [39].

3. Métodos para la detección de − -glucan en cereales y estándares relacionados

− -glucan es ampliamente utilizado en alimentos y otros campos, y tiene importantes actividades fisiológicas. Por lo tanto, el contenido de glucan debe ser detectado en todos los aspectos de la industria de la avena (cría, procesamiento, desarrollo de productos, etc.). La tabla 2 resume los principios, ventajas y desventajas, y los estándares relevantes de los métodos actuales de detección de glucan.

3.1 método enzimático

En la actualidad, el método enzimes el método más comúnmente utilizado para detectar − -glucan y se ha desarrollado en un kit que se ha convertido en un método clásico de detección comercial. Este método fue propuesto y mejorado por primera vez por McCleary en 1985 [14] y puede ser utilizado para detectar el contenido de -glucano en los cereales y sus productos. El método enzimes un método reconocido internacionalmente para la detección de − -glucan y ha sido certificado por muchas autoridades internacionales como la asociación americana de químicos analíticos (AOACInternational, 995.16) [40] y la asociación americana de químicos de cereales (AACC, 32-23.01) [41].

Este método utiliza lichenasa y − -glucosidasa para hidrolizar (figura 1). Primero, el − -glucano en los granos o sus productos se disuelve en agua hirviendo, y luego se hidroliza específicamente en pequeños oligosacaridos moleculares por lichenasa (lichenasa). Después de eso, la − -glucosidasa se utiliza para escindien moléculas individuales de glucosa. Mediante la medición de la detección cuantitativa de glucosa de -glucan, incluso si la glucosa se convierte en una sustancia coloreada con glucosa oxid, y la cantidad se detecta cuantita una longitud de onda de 510 nm. Este método es altamente específico y no interfiere fácilmente con otros polisacáridos. Los resultados de detección son altamente precisos y estables, y es el método más ampliamente utilizado para detectar − -glucan. Senembargo, la licheninasa y glucosidasa de alta pureza y altamente específicas son caras, y el costo de detección es alto.

Con el fende reducir la cantidad de muestra utilizada, ahorrar el consumo de reactivos y reducir los costos de las pruebas, Hu y Burton [42] hicieron algunas mejoras a este método de prueba. Utilizaron un método de placa de 96 pozos para determinar el contenido de − -glucano de 21 muestras diferentes de avena, reduciendo la cantidad de lichenasa y − -glucosidasa utilizada en el método enzimtradicional en un 25%, reduciendo el costo de las pruebas de cada muestra en un 22% y los costos de mano de obra en un 25%. Posteriormente: Motilva et al. [43] utilizaron un micro método basado en el ensayo enzimático Megazyme para optimizar aún más la detección de muestras con un contenido de − -glucan que oscila entre 0,27% y 75%. El método tradicional de la enzima megazyma requiere 0,1 mL de − -glucosidasa para ser añadido después de que la muestra es hidrolizada por lichenasa para hidrolizen en monómeros de glucosa, y la reacción es coloreada con 3 mL de reactivo GOPOD (glucosa oxid). El micro método mejorado solo requiere 20 μL de -glucosidasa y 210 β L de GOPOD. Las pruebas han demostrado que los resultados no difieren significativamente del método enzimático.

3.2 cromatografía

La cromatose puede utilizar para determinar el contenido de − -glucan de los cereales, ya que los polisacáridos se pueden descomponer en sustancias más pequeñas en condiciones ácidas a una cierta temperatura. La concentración de la solución ácida, la temperatura y la duración de la hidrólisis afectan a la eficiencia de la hidróli, provocando una hidróliincompleta o daños en la estructura de los productos monosacáridos. La glucosa hidrolizada puede ser analizada por cromatode gases (GC) o cromatolíquida de alto rendimiento (HPLC). Johansson et al. [33] compararon la hidrólisis del − -glucan con tres soluciones ácidas (HCl, TFA y H2 SO) a diferentes concentraciones ácidas, temperaturas y tiempos de hidrólisis. Los resultados mostraron que el − -glucan no fue hidrolizado bajo las condiciones ácidas más débiles (37 β C, pH = 1, simulando las condiciones ácidas del jugo gástrico humano), mientras que las tres soluciones ácidas obtuvieron el mismo contenido de glucosa al hidrolizar el − -glucan a 120 °C, durante 1 h, para obtener el mismo contenido de glucosa. Los resultados de este método son similares a los del método enzim, con alta precisión. Senembargo, requiere el uso de costosos equipos cromatográficos, y las condiciones experimentales del proceso de pretratamiento (alta temperatura, ácido fuerte) plantean un alto riesgo de seguridad. Estos factores limitan el uso de este método hasta cierto punto.

3.3 método rojo del Congo

El colorrojo Congo puede formar un complejo con − -glucan. El rojo Congo es un colorrojo que absorbe la luz en la región ultraviolevisible. Después de que se añade β-glucan, la absorbancia del complejo en una longitud de onda de 550 nm cambia con la concentración de β-glucan. Cuando se utiliza este método para detectar el contenido de − -glucan de los cereales, un estándar de − -glucan de diferentes concentraciones debe ser añadido a una cierta concentración de solución de rojo Congo, mezclado para establecer una curva de concentración estándar de − -glucan, y luego el contenido de − -glucan en la muestra puede ser medido [35]. El colorrojo Congo utilizado en este método es relativamente barato, por lo que el costo es bajo. Senembargo, la Unión del rojo Congo al − -glucano no es específica, y cuando se aplica a los cereales, es fácilmente interferido por otros polisacárihidrosolucomo los pentosanos, lo que afecta a los resultados de la medición. Por lo tanto, este método tiene ciertas limitaciones en la precisión.

Método de fluorescencia 3.4

El método de fluoresces también uno de los métodos comúnmente utilizados para cuantificar − -glucano. Este método se basa en el cambio en la intensidad de fluorescde la solución, es decir, el agente fluoresccalcofluor y − -glucan pueden formar específicamente un complejo, y la intensidad de fluorescde la solución del sistema se relaciona con la concentración de − -glucan. Basado en este principio, Jorgensen [44] diseñó un sistema de análisis de inyección de flujo automático en 1988, que utiliza la química analítica húmeda para mezclar la solución de la muestra con el agente fluorescpara detectar el contenido de − -glucan en la muestra.

Este método ha sido ampliamente utilizado para detectar − -glucan en muestras líquidas como la cerveza y el mosto. El método requiere que la muestra que contiene − -glucan se diluya en una solución, y una solución estándar − -glucan se utiliza para establecer una curva estándar de intensidad de concentración y fluoresc, de la que se puede obtener el contenido de − -glucan en la muestra. Comparado con el método enzimtradicional, el método de fluorescencia es menos costoso. Al mismo tiempo, los resultados del método de fluorescencia se correlacionsignificativamente con el método enzim, y la precisión es mayor. Sin embargo, el agente fluoresccalcofluor no es muy estable y se descompone fácilmente por la luz. Además, la composición del sistema de cereales es compleja, y sustancias como las proteínas y el almidón también pueden interferir en los resultados. Estos factores limitan su aplicación en la determinación de − -glucan en cereales hasta cierto punto.

Método de viscosidad de 3,5

El beta-glucano es altamente visco, y cuanto mayor es la concentración de la solución, mayor es la visco. Para la harina de avena y de cebada, la viscoaparente del purín depende principalmente del contenido de beta-glucano, mientras que el almidón y las proteínas tienen sólo un efecto pequeño. Collesirghie et al. [16] prepararon homogenatos de harina de avena mediante la adición de harina de avena al agua desionizada, una solución de nitrato de plata (para inhibide la endógena − -glucanasa) y una solución alcalina (para disollos − -glucanos soluen en agua e insoluen en agua), respectivamente, y estudiaron la relación entre la viscoaparente del homogenato y el contenido de − -glucan. Método (PLS) para predecir el contenido de − -glucan. Los resultados mostraron que la viscoaparente del homogeneizado de harina de avena con solución de nitrato de plata puede ser utilizada para predecir muy bien el contenido de − -glucan, siendo los resultados muy cercanos a los obtenidos por el método enzim. El método de viscoes simple en principio, de bajo costo y fácil de operar. Sin embargo, la viscode las soluciones de − -glucan también se ve afectada por el peso molecular, y las muestras con pesos moleculares similares deben ser utilizadas cuando se utiliza este método. Por lo tanto, este método puede ser usado para detectar el contenido de − -glucan con el mismo peso molecular, como el contenido de − -glucan en diferentes productos hechos de la misma semilla de avena.

3.6 método de capacidad de retención de disolventes

La capacidad de retención de disolventes (SRC) se refiere a la capacidad de la harina de trigo para retener una cierta cantidad de disolvente bajo una cierta fuerza centrífuga, y se puede utilizar para medir las características de calidad de la harina de trigo y sus productos. El principio es que las moléculas poliméricas en la harina de trigo, tales como proteínas, almidón, pentosanos, etc., pueden hincharse a grados variables en disolventes diferentes. La prueba SRC puede usar cuatro solventes: agua, 5% (p/p) solución acuosa de ácido lác, 5% (p/p) solución acuosa de carbonato de sodio, y 50% (p/p) solución acuosa de sacarosa. Estos cuatro disolventes corresponden a diferentes componentes poliméricos en la harina de trigo. El agua SRC refleja la capacidad de hinchde todos los componentes poliméricos de la harina; El ácido lácsrc tiene un valor de pH similar durante el proceso de fermentación de la masa y por lo tanto está relacionado con la capacidad de inflamación de la glutenina; La solución de carbonato sódico SRC tiene un valor de pH más alto, que puede disocilos grupos hidroxilo del almidón. El almidón dañado puede absorber agua y expandirse en esta solución, por lo que este SRC está relacionado con el contenido de almidón dañado. La solución de sacarosa SRC es concentrada y neutra, y esta solución amplifica el efecto de hinchazón de la redarabinoxilana, por lo que se relaciona con el contenido de pentosanos de trigo [45].

El beta-glucano es un gran polímero molecular con muchos grupos hidroxilo y una fuerte absorción de agua. Las unidades de fructan enlazbeta1,3 pueden unirse a moléculas de agua, por lo que tiene una fuerte absorción de agua y capacidad de hinchazón. Niu et al. [37] aplicprimero el método de trigo SRC a la avena, estudiaron la relación entre diferentes solventes y las características de hinchazón de la avena, y seleccionun solvente de clorde calcio a partir de esto para reflejar el contenido de − -glucan de la avena. Este método puede añadir directamente el solvente correspondiente (25 g) a 5 g de harina de avena cuando se prueba el contenido de -glucan, y después de la centrifu, el contenido de -glucan puede predecirse midiendo el peso del solvente retenido por la harina de avena. El principio es simple y la operación es fácil. Sin embargo, otros polímeros macromoleculares en el sistema de cereales también pueden causar hinchazón, y cuando el contenido de − -glucan es bajo, no es fácil de detectar. Por lo tanto, la precisión de este método debe ser optimiaún más. Este método se puede utilizar para predecir el rango aproximado del contenido de OAT − -glucan, y por lo tanto se puede utilizar para el cribado preliminar del contenido de − -glucan en la cría y otros procesos. Además, nuestros resultados de investigación anteriores también muestran que también hay una correlación significativa entre la harina de avena SRC y el peso molecular de − -glucan [46], lo que proporciona algunas ideas para la detección rápida del peso molecular de − -glucan.

3.7 método de infrarrojo cercano

La espectroscopia NIR se ha utilizado ampliamente en la agricultura, los productos farmacéuticos, la fabricación de polímeros y las pruebas de calidad de los alimentos. En la región espectral NIR, los enlaces químicos en las moléculas (como los enlaces C-H, N-H, O-H) tienen picos característicos en longitudes de onda específicas. La composición de una sustancia puede ser detectada mediante el análisis de los picos de duplicación de frecuencia de una o más moléculas en una sustancia#39; región espectral s. Cuando se utilizan métodos de infrarrojo cercano para predecir el contenido de un componente, el espectro de infrarrojo cercano de un conjunto de muestras primero debe ser recogido y el espectro original pre-procesado. El análisis matemático se utiliza entonces para establecer un modelo de predicción para el componente, y finalmente el modelo se prueba y se convierte para su aplicación [47]. En la actualidad, algunos estudios nacionales y extranjeros han reportado el uso de métodos de infrarrojo cercano para detectar − -glucan en cereales. Las muestras utilizadas en estos estudios fueron principalmente harina de cereal molido.

Algunos estudios utilizaron granos enteros intactos para pruebas, y estos estudios utilizaron los resultados del ensayo enzimático Megazyme como valor de referencia para la modelización matemática [48-54]. Schmidt et al. [38] evaluaron el potencial de la espectroscopia de infrarrojo cercano para la determinación de − -glucano en cebada. Se analizaron 107 muestras de cebada (integral y harina de cebada, respectivamente) utilizando cuatro instrumentos de infrarrojo cercano diferentes. En primer lugar, se recogieron los espectros y se preprocesaron los espectros brutos. Se utilizó un método de mínimos cuadrados parciales (PLS) para establecer un modelo de predicción en infrarrojo cercano para − -glucano en cebada. Los resultados muestran que todas las pruebas muestran una cierta aplicabilidad para 0,78). Este método es rápido y simple, y puede ser usado para probar grandes lotes de muestras en un corto período de tiempo. Cabe señalar que la precisión del método NIR se ve afectada por muchos factores, incluyendo la precisión del valor de referencia químico de la muestra, el contenido del índice a medir en la muestra y si se distribuye normalmente, el fondo alto y picos superpuestos, el tamaño de la muestra, y el modelo matemático seleccionado.

La estructura de − -glucan es simple, y los enlaces químicos dentro de la molécula pueden superponerse fácilmente con otros componentes de la avena (almidón, proteína, etc.), afectando la precisión. Este método es adecuado para probar cuando el tamaño de la muestra es grande, pero todavía requiere un gran número de muestras con valores de referencia químicos conocidos (el tamaño de la muestra generalmente debe ser mayor de 100) para establecer un modelo cuantitativo NIR.

3.8 ensayo de inmunoabsorción de enlace enzimático

El ensayo ELISA es un método común de análisis bioquímico. Este método utiliza anticuerpos específicos para detectar la presencia de ligandos en muestras líquidas. ELISA también se puede utilizar para determinar los niveles de trazas de − -glucan en los cereales. Rampitsch et al. [39] desarrollaron diferentes anticuerpos monoclony estudiaron su grado y especificidad de reacción con − -glucanos de avena y cebada. Los resultados del ELISA para la detección de − -glucan de avena comercial fueron lineales dentro de un cierto rango (1-20 ng − -glucan·mL-1). Además, optimizaron las condiciones experimentales para el ELISA y desarrollaron un método que puede ahorrar tiempo y costos de mano de obra para la detección de grandes cantidades de muestras. En teoría, el método ELISA puede detectar − -glucan a nivel de nanograma y puede ser utilizado para pruebas de trazabilidad cuando el tamaño de la muestra es pequeño. Sin embargo, debido a la extremadamente alta especificidad y sensibilidad de este método, puede no ser capaz de identificar todos los − -glucanos con estructuras similares, y su aplicabilidad necesita ser estudiada más a fondo.

4 conclusión

El grano − -glucano es una fuente importante de fibra dietética, y el contenido de − -glucan debe ser detectado en muchos procesos como el mejoramiento y procesamiento de granos, especialmente avena y cebada. Entre los métodos actualmente desarrollados para detectar − -glucan en granos, métodos enzim, métodos cromatográficos y métodos de fluorescse pueden utilizar para cuanticon precisión el contenido de − -glucan. El método de viscoy el método de capacidad de retención de disolvente son fáciles de operar y se pueden utilizar para el cribado preliminar del contenido de − -glucan. La espectroscopia de infrarrojo cercano es rápida y se puede utilizar para pruebas por lotes cuando hay un tamaño de muestra grande. Uno puede elegir razonablemente un método de prueba que satisfsus necesidades teniendo en cuenta factores como la precisión, la eficiencia operativa y el costo.

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