The Uses of Astaxanthin in Aquaculture (en inglés)

Lunastaxantina es un pigmenarojo carotenoide natural que se encuentra principalmente en los crustáceos (por ejemplo, cangrejos, cangrejos, langostasy krill), el salmón y otros organismos marinos y microorganismos, incluidas las microalgas [1-3]. Los peces, como otros animales, carecen de la capacidad de sintetizar astaxantina de novo y deben obtenerla de los alimentos. Los peces salvajes obtienen astaxantina de sus presas, mientras que los peces de piscila obtienen de su alimentación. Astaxantina Natural tiene anti-inflamatorio, antioxidante, color, mejora de la inmunidad, anti-ateroscler, anti-envejecimienay otros efectos, y es ampliamente utilizado en los alimentos funcionales, suplementos dietéticos, bebidas, cosméticos y las industrias de atención de la salud [4-6].

En los últimos años, la astaxantina no solo se ha utilizado en productos para la salud humana, sino también como aditivo alimentario en la cría de animales. El uso de astaxantina en la acuicultura puede mejorar la inmunidad animal, reducir la mortalidad y reducir el abuso de antibióticos [7]. Además, astaxantina juega un papel clave en la pigmentación de algunos animales acuáticos, como la trucha arco iris y peces ornamentales [8]. Este documento revisa las fuentes, las propiedades físicas y químicas y las aplicaciones de la astaxantina en la acuicultura.

1 fuentes de astaxantina

El principalFuentes de astaxantinaSelmicroorganismos simples, especialmente algas, levaduras, hongos y bacterias. Astaxantina no puede ser sintetizbioquímicamente por los animales, pero puede acumularse en los tejidos animales por comer organismos que contienen astaxantina. Los extractos naturales de astaxantina por lo general contienen otros tipos de carotenoides (− -caroteno, cantaxantina y luteína) que están asociados cella actividad biológica. Diferentes microorganismos y animales marinos, incluyendo microalgas, levadura, los músculos del salmón salvaje y de cría, trucha, krill y cangrejos de río, plantas complejas, y algunas aves son fuentes naturales de astaxantina. Astaxantina comercial es generalmente sintetizquímicamente o producido por Xanthophyllomyces dendrorhous o HaematococcusPluvialis [9-11]. El contenido de astaxantina en la carne de salmón salvaje es de 3-38 mg·kg-1, mientras que el contenido de astaxantina en la carne de trucha arco iris es de 12-25 mg·kg-1 [12]. Por lo tanto, los filetes de salmón salvaje y de piscise pueden utilizar como una fuente dietética de astaxantina.

Impulsada por la demanda del mercado y los beneficios ecológicos, la producción de astaxantina a partir de microalgas y la aplicación práctica de astaxantina en la acuicultura se han convertido en centros de investigación en los últimos años. Los investigadores han estudiado el aislamiento de las cepas de microalgas ricas en astaxantina y el mecanismo por el cual las células de las algas sintetizan astaxantina. Actualmente, Haematococcus pluvialis, Chlorella zofingiensis y Scenedesmus obliquus han sido identificados como cepas de algas con el potencial de producir astaxantina natural (ver tabla 1). El uso de astaxantina algal para criar peces se ha considerado una forma viable de lograr el desarrollo sostenible en la industria de la acuicultura.

2 propiedades físicas y químicas de astaxantina

La astaxantina es un carotenoideCon la fórmula molecular C40H52O4 (masa molecular relativa 596.84), densidad 1.071 g·mL-1, punto de fusión 216 °C,y punto de ebulli774 °C. La astaxantina tiene poca solubilidad en agua y es fácilmente soluble en disolventes orgánicos. Su solubilidad en diclorometano, cloroform, dimetilsulfóxido y acetona es de 30 mg·mL-1, 10 mg·mL-1, 0,5 mg·mL-1 y 0,2 mg·mL-1, respectivamente [20].

La estructura molecular de astaxantina se muestra en la figura 1A. Está compuesto de un doble enlace conjuen el medio que consiste en cuatro unidades de isopreno, y una estructura de anillo hexexamérico de hidroxicanthaxanthenen ambos extremos. C-3 y C-3 ' Tienen centros quirales. Dado que un centro quirpuede tener dos conformaciones, los dos átomos de carbono quirc-3 y C-3' De astaxantina puede existir en la forma Ro S,por lo que astaxantina tiene tres isómeros: (3S, 3S'), (3R, 3R') y (3R, 3S') (ver figuras 1B~D), donde (3S, 3S') y (3R, 3R ') son enantiómeros, cada par de enantiómeros tiene una rotación óptica opuesta, lo que hace que la luz polaripolarizada plana gire a la izquierda o derecha, mientras que el (3R, 3S ') isómero no tiene rotación óptica.

La astaxantina existe en dos Estados: libre y esterificada. Astaxantina sintética es principalmente en el estado libre (3S, 3R'), mientras que la astaxantina natural se encuentra principalmente en el estado esterificado (3S, 3S') y (3R, 3R'). La astaxantina producida por Rhodopseudomonas palustris es principalmente la cis (3R, 3R') diéster [21], y la astaxantina contenida en Haematococcus pluvialises principalmente all-trans (3S, 3S') monoester [22]. Como miembro de la familia de los carotenoides liposolubles, la estructura especial de la astaxantina puede conducir a las siguientes desventajas en su aplicación:

(1) hidrofobicidad. La astaxantina es una sustancia amante del aceite con baja solubilidad en disolventes no polares. Astaxantina tiene dos grupos hidroxilo en cada extremo, y cada grupo hidroxilo puede interactuar con un ácido graso para formar un éster. La astaxantina esterificada es más hidrofóbica que la astaxantina libre [23].

(2) inestabilidad: debido a la estructura del doble enlace conjuinsatur, los monómeros de astaxantina son extremadamente inestables. Durante el procesamiento y almacenamiento, son propensos a la degradación y decoloración debido a los cambios en la luz, la temperatura y el contenido de oxígeno, lo que hace que pierdan su actividad biológica original y los resultados en la mala calidad y el color del producto final.

3 aplicación de astaxantina en acuicultura

Durante mucho tiempo, astaxantina se ha añadido a la alimentación de los peces como un pigmento natural para el cultivo de salmón, besugo y algunos peces ornamentales. En los últimos años, más y más estudios han encontrado que la astaxantina tiene un efecto positivo en el aumento de peso y la respuesta inmune de los animales acuáticos, y la aplicación de astaxantina se ha ampliado a los crustáceos y algunas especies de peces económicos. Los carotenoides están estrechamente relacionados con un gran número de funciones fisiológicas en plantas y animales. El color de la mayoría de los animales acuáticos y los tejidos animales se atribuye a la presencia de varios carotenoides [24-25]. Como el principal carotenoide en los tejidos de animales acuáticos, astaxantina tiene las funciones de pigmentación, anti-oxidy anti-estrés.

3.1 efecto de astaxantina en la función de coloración de los animales acuáticos

La pigmentación es un proceso importante en la cría de salmón, trucha, dorada, peces ornamentales y crustáceos, y los consumidores prefieren el salmón rosado con un alto contenido de astaxantina. Además, el valor comercial de los peces ornamentales depende en parte de su color de piel o color muscular. El color de los animales acuáticos juega un papel importante en la aceptación del consumidor, la calidad percibida y el precio. Los crustáceos de criadero con conchas de color amarillo claro generalmente tienen un precio de mercado más bajo que los que tienen conchas de color rojo o naranja oscuro. En la mayoría de los casos, los peces no pueden sintetizar pigmentos en sus cuerpos, pero pueden absorber pigmentos exógenos. Por lo tanto, la adición de astaxantina a la alimentación puede mejorar la capacidad de coloración de peces y crustáceos y la concentración de astaxantina en sus tejidos [26-27].

El salmón, la trucha y el besugo están ampliamente distribuidos en los océanos Pacífico y Atlántico, y son ricos en proteínas, lípidos, pigmentos naturales y minerales, así como otros nutrientes esenciales para el cuerpo humano. En el mercado, la pigmentación de la piel y los músculos del salmón, la trucha y el besugo determina en cierta medida su calidad. Senembargo, en la naturaleza, la disminución de los recursos pesqueros ha limitado gravemente el suministro al mercado de estos peces de alto valor añadido. Con el fin de proporcionar al ser humano productos acuáticos de alta calidad, la acuicultura de salmón, trucha y besugo se ha desarrollado rápidamente, aumentando la demanda del mercado de piensos para peces.

Sigurgisladottir Et al.[28]agreg88,6 mg·kg-1 de astaxantina a la alimentación del salmón del Atlántico. Los resultados mostraron que el contenido de astaxantina en el músculo de salmón del grupo experimental fue de 2.0~2.5 μg·kg-1, mientras que el grupo control tuvo 0.5~0.8 μg·kg-1, indicando que la adición de astaxantina aumentó la pigmentación en el músculo de salmón. En el cultivo de la trucha arco iris, el contenido de astaxantina en la alimentación de los peces se incrementó de 0 a 27,6 mg·kg-1, lo que resultó en un aumento en el contenido total de carotenoides y el valor de croma muscular en los músculos. Con un contenido de astaxantina de 27,6 mg·kg-1 a 46,1 mg·kg-1, no hubo aumento significativo en el contenido total de carotenoides y el valor de croma [29]. La razón principal de este fenómeno puede ser que astaxantina excesiva no puede ser totalmente absorbida por los animales acuáticos.

Zhang Chunyan etAl.[30] añadi1,0 g·kg-1 de astaxantina sintética (grupo Ast) y 4,4 g·kg-1 de extracto de Haematococcus pluvialis (grupo HE, contenido de astaxantina 100 mg·kg-1) a la alimentación de trucha arco iris, y el grupo control fue la dieta basal. Después de alimentarse durante 6 semanas, se encontró que el enrojecimiento muscular yel amarillo eran significativamente más altos que los del grupo de control. A. Kurnia et al. [31]mostraron que el contenido de astaxantina en los tejidos de besugo alimentados con astaxantina sintética y natural alcanzó 7,76 mg·kg-1 y 12,7 mg·kg-1, respectivamente. C. Georges et al. [32]alimentaron a la trucha arco iris con astaxantina sintética (grupo AST) y astaxantina natural derivada de Haematococcus pluvialis (grupo ALG), y los resultados mostraron que las concentraciones plasmáticas y musculares de astaxantina, la saturde color muscular (C*), el enrojecimiento (a*) yel amarillamiento (b*) de la trucha arco iris del grupo AST fueron mayores que las del grupo ALG,lo que indica que la astaxantina de diferentes fuentes tiene diferentes efectos sobre la pigmentación de diferentes animales acuáticos.

Jiang J. F. et al. [33]añadiastaxantina de diferentes fuentes y concentraciones (20, 50, 75 y 100 mg·kg-1) a la alimentación de fresas del mar rojo (Pseudochromis fridma − nii) y llevó a cabo un ensayo de alimentación de 42 días para estudiar el efecto de astaxantina en la coloración de las fresdel mar rojo. Los resultados demostraron que el brillo de los peces en los grupos alimentados con 75 mg·kg-1 y 100 mg·kg-1 de astaxantina natural y 100 mg·kg-1 de astaxantina sintética fue significativamente menor que el del grupo de control, y la saturde color de la piel fue significativamente mayor que la del grupo de control, y el tono de todos los grupos (excepto el grupo de 25 mg·kg-1 de astaxantina natural) fue significativamente diferente de la del grupo de control.

N. A. Bell et al. [34]agregpolvo de langosta rico en astaxantina y rico en proteínas a la alimentación de peces de colores (Carassius auratus), y encontraron que el brillo, enrojecimiento y amarillde los peces de colores aumentaron. Wang Junhui et al. [35] estudiaron el efecto de las diferentes concentraciones de astaxantina sobre el color corporal de la carpa koi (Cyprinus Carpio L.) y encontraron que la adición de astaxantina no tenía efecto sobre el brillo del color corporal y que el enrojecimiento (a*) yel amarillamiento (b*) del color corporal tendían a aumentar primero y luego disminuir con el aumento de la astaxantina. Además de afectar a la pigmentación de los peces ornamentales, la adición de astaxantina a la alimentación también puede afectar el comportamiento basado en el color de los peces ornamentales. E. Lewis et al. [36]encontraron que la adición de astaxantina a la alimentación de peces rosa roja (Puntius titteya) puede reducir su comportamiento de ataque espejo y el comportamiento de selección de pareja.

Muchas especies de crustáceos tales como cangrejos ermitaños, cangrejos rey rojo, cangrejos de río, langostas de garras, langostas espiny camarcamarde pasto perderán o no desarrollarán la pigmentación si no consumen suficientes carotenoides [37-41]. Se ha demostrado que la pigmentación en el camarón banano es heredi[42], lo que indica que puede haber una base genética para la retención de pigmentos carotenoides. Long X. W. et al. [43]encontraron que cuando los cangrejos adultos de China (Eriocheir sinensis) fueron alimentados con una dieta que contenía polvo de Haematococcus pluvialis rico en astaxantina natural, el enrojecimiento (a*) de los ovarios y las conchas de los cangrejos de China aumentaron significativamente con el aumento en la cantidad de polvo de Haematococcus pluvialis en la dieta, mientras que el brillo (L*) yel amarill(b*) mostraron una tendencia a la baja. Este resultado es consistente con el polvo Han T Haematococcus pluvialis que se añadió a la dieta, el enrojecimiento (a*) de los ovarios y caparazón del cangrejo chino aumentó significativamente, mientras que el brillo (L*) yel amarill(b*) mostraron una tendencia a la baja. Este resultado es consistente con los resultados de la investigación de Han T. et al. [44]sobre el cangrejo nadador (Portunustrituberculatus).

3.2 efecto de astaxantina en la función antioxidante de los animales acuáticos

Las especies reactivas del oxígeno (ROS) son un producto natural del metabolismo aeróben los organismos vivos y son un tipo de radical libre necesario para la supervivencia. Las especies reactivas del oxígeno juegan un papel importante en la regulación de ciertas actividades celulares, la apoptosis, el sistema inmune, la transcripción de genes, etc., pero son altamente perjudiciales para las células. Para hacer frente a las especies reactivas de oxígeno constantemente generadas, el cuerpo se basa en un sistema de defensa antioxidante que incluye antioxidantes enzimy no enzim. Los antioxidantes enzimincluyen la peroxid(POX), la superóxido dismutasa (SOD) y la catalasa (CAT); Los antioxidantes no enzimincluyen vitamina E, vitamina C, oligoelementos y carotenoides los carotenoides. La ROS es altamente reactiva hacia lípidos, proteínas y nucleótidos. La reacción de ROS con ácidos grasos poliinsaturados (agpi) conduce a la peroxidlipí. Esta reacción produce un nuevo ROS, que continúa reaccioncon nuevos PUFA, dando lugar a un ciclo de reacciones oxid. Los animales acuáticos son ricos en PUFunn-3 y son extremadamente vulnerables a los ataques del oxígeno y otros radicales libres.

En años recientes, astaxantina, un antioxidante eficaz encontrado en ciertos organismos marinos, ha atraído la atención creciente de investigadores [45-46]. Debido a que la astaxantina contiene dobles enlaces conjug, grupos hidroxilo y grupos ceto en su estructura molecular, puede reaccionar con radicales libres de oxígeno para eliminar los radicales libres y ejercer un efecto antioxidante. Astaxantina se ha demostrado que tienen una fuerte actividad antioxidante, 10 veces la de los carotenoides (tales como cantaxantina, beta-caroteny luteína), 65 veces la de la vitamina C y 100 veces la de la vitamina E [47]. La actividad antioxidante de astaxantina se manifiesta en su capacidad para eliminar oxígeno singlete, superóxido y radicales hidroxilo, así como otras especies reactivas de oxígeno (ROS), especies reactivas de nitrógeno (RNS) e inhibide la peroxidlipí[48]. La astaxantina reacciona con la grasa para formar ésteres de astaxantina, que pueden inhibieficazmente la reacción química entre los radicales libres de oxígeno intracelular y los ácidos grasos insaturados, reduciendo así el daño oxidativo al ADN y las respuestas inflamatorias, mejorando el body's de la membrana, protegiendo así la membrana y los ácidos grasos de la peroxidlipí.

O. Z. Barim et al. [49]añadivitamina E (VE), vitamina C (VC), vitamina A (VA), astaxantina (AST) y − -caroten(βC) A la dieta del cangrejo del Danubio (Astacus leptodactylus). Durante el experimento se midió el número y tamaño de los huevos y se determinó el contenido de VE, VC, VA, AST, → C y malondialdehído (MDA) en los tejidos. Los resultados mostraron que el número y tamaño de huevos en los grupos VE y AST fueron los mejores en cada grupo. En el grupo AST, el contenido de MDA en el hígado, ovari, branquias y tejidos musculares fue el más bajo, lo que indica que el grupo con astaxantina tuvo la resistencia más alta. Yi X. et al. [50]mostraron que la adición de astaxantina a la dieta de la croaker amarilla podría aumentar la actividad de SODy GSH-Px en el hígado de la croaker amarilla, aumentando así la concentración general de antioxidantes del cuerpo de la croaker amarilla.

P. Ma S. L. et al. [51]estudiaron el efecto de agregar astaxantina a la dieta de Hali otus discus hannai) agregada a la dieta de astaxantina sobre su capacidad antioxidante y encontraron que, en comparación con el grupo de control, el grupo de astaxantina de Haliotis discus hannai aumentó significativamente el contenido de SOD sérico y CAT, mientras que el contenido de MDA disminuyó significativamente. SOD y CAT reflejan el body's capacidad para compensar los radicales libres, y cuanto más alto el contenido, más alta la capacidad antioxidante.

3.3 efecto de astaxantina en la resistencia al estrés y la resistencia a las enfermedades de los animales acuáticos

Las operaciones de acuicultura de alta densidad a menudo exponen a los animales a diversas tensiones físicas. Estos factores de estrés provienen de factores como la clasificación, el transporte, el manejo, la vacunación y el hacinamiento, que causan que los animales estén en un estado de alto estrés e inmunosupresión, lo que puede alterar el equilibrio dinámico entre los animales acuáticos y su entorno, provocando así una respuesta de estrés. El estrés excesivo conduce a la disfunción fisiológica, reducción de la tasa de crecimiento, inmunosupresión, susceptia la invasión de enfermedades, e incluso la muerte en animales acuáticos [52-53]. Por lo tanto, es importante aliviar las condiciones adversas causadas por el estrés en la investigación acuícola.

Un estudio temprano mostró que la ingesta diaria de una dieta que contenga 230-810 mg·kg-1 de astaxantina durante 4 semanas podría mejorar la tolerancia de Penaeusmonodona un ambiente alto en sal [54]. Y. H. Chien et al. [55]observaron que una dieta suplementada con 360 mg·kg-1 de astaxantina durante una semana podría inducir tolerancia a concentraciones bajas de oxígeno disuelto en las larvas de P.monodon. Después de ser probado con diferentes factores de estrés, Penaeus monodonalimentado con una dieta que contiene astaxantina (80 mg·kg-1) durante 8 semanas mostró una mayor capacidad de defensa antioxidante (menores niveles de SOD) y una mejor función hepática (menor AST y ALT), así como una mejor resistencia al estrés hiperosmótico y térmico.

Del mismo modo, cuando se alimentó con una dieta que contiene 71,5 mg·kg-1 de astaxantina durante 8 semanas, Penaeus monodon exhibiun sorprendente estado antioxidante y resistencia al estrés de amoníaco a diferentes niveles (0,02, 0,2, 2, 20 mg·L-1) [56].

SOD inferior, AST y ALT indican que varias enzimas antioxidantes en los tejidos de P. monodon se consumen después del estrés biológico, aumentando la capacidad antioxidante y la función hepática. Los estudios anteriores muestran que la astaxantina es un nutriente muy importante para P. vannamei bajo estrés fisiológico causado por presión externa. K. Supamattaya et al. [57]alimentaron a P. vannamei con un alimento que contenía 200-300 mg·kg-1 de extracto de Dunaliella salina, pudo tolerar ambientes con bajo nivel de oxígeno de 0,8-1 mg·L-1 y resistir significativamente el síndrome de la mancha blanca viral (WSSV). También se encontró que el tejido de Penaeus monodon alimentado con extracto de Dunaliella salina tenía un mayor contenido de astaxantina, lo que indica que podían convertir rápidamente el beta-carotenen astaxantina.

Resultados similares se encontraron en un gran número de estudios sobre Litopenaeus vannamei y otros crustáceos. Zhang J. et al. [58]encontraron que Litopenaeus vannamei (con un suplemento dietético de 125-150 mg·kg -1 astaxantina, además de aumentar la regulación de los niveles de expresión del factor inducible por hipoxia (HIF-1 −), el superóxido de mangansuperdismutasa citosólico (cMnSOD) y el ARNm CAT, también aumentó la capacidad antioxidante total y la tolerancia al estrés hipóxico (0,8 mg·L-1). En un estudio relacionado, Niu J. et al. [59]demostraron que la alimentación con una dieta combinada de astaxantina (100 mg·kg-1) y colesterol (1%) mejoró la expresión gédel ARNm del factor HIF-1 − y la proteína de choque térmico HSP70 en el camarón Vanamei, lo que mejoró su tolerancia durante un transporte simulin vivo de 36 h.

Wang H. et al. [60]encontraron además que después de ser administrado con 80 mg·kg-1 de astaxantina durante 4 semanas, Penaeus vannamei tenía una alta resistencia al Virus virusdel síndrome de la punto blanca (WSSV), que se relacioncon la mejora de los indicadores inmunhemololima, como la actividad fagocí, el recuento total de células sanguíneas, la actividad sérica de la fenoloxidasa, la actividad del radical antisuperóxido sérico, la actividad de la lisozima sérica y la actividad antibacteriana sérica. Después de 10 semanas de alimentarse con una dieta que contiene diferentes dosis de astaxantina (50-150 mg·kg-1), el camarón japonés (Macrobrachium nipponense) puede tolerar diversas tensiones físicas y químicas, tales como el suministro anóxico (0,5 mg·L-1), el estrés por amoníaco (0,75 mg·L-1) y el estrés por frío (0 ℃) [61]. Jiang X. D. et al. [62]añadi30-120 mg·kg-1   De polvo de Haematococcus pluvialis, y encontró que en comparación con el grupo de control (sin añadir polvo de Haematococcus pluvialis), la mortalidad de cada grupo añadido se redujo en gran medida al experimentar estrés de amoníaco. También se encontró que la expresión de genes de enzimas antioxidantes en cada grupo con agregado de Haematococcus pluvialis se incrementó significativamente, lo que puede estar relacionado con su baja mortalidad.

Astaxantina también tiene un efecto beneficioso sobre los peces. Liu F. et al. [53]estudiaron el efecto de la ingesta dietde astaxantina en la resistencia al estrés de Pelteobagrus fulvidraco. Cuando se alimenta a una dosis de 80 mg·kg-1 durante 60 días, puede aumentar el contenido de HSP70 en el hígado, SOD en el hígado, y la proteína total sérica (TP) y la tolerancia al estrés de hacinaguda. Pruebas posteriores de ataque por Proteus mirabilis mostraron que astaxantina puede reducir significativamente la mortalidad de Pelteobagrus fulvidraco bajo estrés de hacin. Dosis durante 60 días, puede aumentar el contenido de HSP70 del hígado, SOD del hígado, proteína total del suero (TP), y la tolerancia al estrés de hacinaguda. La posterior prueba de ataque por Proteus mirabilis mostró que la resistencia del grupo astaxantina fue significativamente mejorada. Li M. Y. et al. [63]estudiaron los efectos de la administración de suplementos de astaxantina sobre el estrés oxidativo indupor lipopolisacáridos y la respuesta inmune en Channa argus, y encontraron que la astaxantina puede aumentar la expresión de las proteínas de choque térmico HSP70 y HSP90 y los genes del receptor de glucocorticoides.

Otro estudio también encontró que la astaxantina inhila la producción de citocinas pro-inflammediante la inhibición de las rutas de señalización NF-κB y MAPKs[64]. Xie J. J. et al. [65]añadieron polvo de Haematococcus pluvialis a la dieta de Golden Pomfret (Trachinotus Ovatus)con polvo de Haematococcus pluvialis durante 8 semanas y luego se sometieron a una prueba de esfuerzo de hipoxia aguda (1,2 mg·L-1). Se encontró que el grupo suplementado con polvo de Haematococcus pluvialis alivila la respuesta inflammediante la activación de la vía de señalización Nef2-ARE para antagonila vía de señalización NF-κB.

4 resumen

La astaxantina es uno de los carotenoides más importantes en la naturaleza y ha atraído la atención de nutricionistas animales debido a su amplia gama de efectos sobre la salud de los animales acuáticos. La adición de astaxantina a la dieta de los animales acuáticos no sólo mejora el color del cuerpo de los animales, pero también tiene un fuerte antioxidante, anti-estrés y anti-enfermedad funciones, y protege las células y tejidos de los animales acuáticos de estrés y daño oxidativo. Con el desarrollo a gran escala e intensivo de China#En la industria acuícola, la aplicación de astaxantina se generalizará cada vez más.

Referencia:

[1]    Begum H,Yusoff F M,Banerjee S, et al. Disponibilidad y utilización depigments desde Microalgas [J]. Crítica crítica comentarios in  La comida Science yNutrition, 2016, 56: 2209-2222.

[2]   Trine Y, Sergey A, Bente R, et al. Transcriptoma y respuesta funcional a la ausencia de astaxantina en salmones del Atlántico alimentados con dietas marinas bajas [J]. Comparative Biochemistry yPhysiology - Part D: Ge⁃ nomics yProteomics, 2021, 39: 110841.

[3]   BarredoJ L, garcía-estrada C, Kosalkova K, et al. Biosíntesis de astax − antina como principal carotenoide en la levadura heterobasidiomiceto Xanthophyllomyces dendrorhous[J]. revistadeFungi, 2017, 3: 44.

[4]   Yoshimi K, Hiroshi Y, Kazuo K. potencial anti-ateropropiedades de astaxantina [J]. Drogas marinas, 2016, 14: 35.

[5]   Callie F, Mi B K, Mink YB, et al. Astaxantina ejerce efectos anti-inflam⁃ matorios y antioxidantes en macrófagos en NRF2-depen⁃ Dent yIndependent Manners [J]. Journal deNutritional Biochem⁃ istry, 2018, 62: 202-209.

[6]   Bilge E, SakineTT, Fadime A K, et al. Evaluación de las propiedades antioxidantes de las formulde astaxantina tópica como productos antienvejecimiento [J]. Jour⁃ nal deCosmetic Dermatology, 2019, 18(1): 242-250.

[7]   Alishahi M,KaramifarM, Mesbah M. efectos de astaxantina y Dunaliel → la salina sobre los carotenoides de la piel, el rendimiento de crecimiento y la respuesta inmune de astronomía  Ocellatus [J]. acuicultura International, 2015, 23: 1239-1248.

[8]   MdMR, Sanaz K, Kyung H C, et al. Efectos de la inclusión dietde astax⁃ anthin sobre el crecimiento, la pigmentación muscular y la capacidad antioxidante de la trucha arco iris juvenil Oncorhynchusmykiss) [J]. Trición preventiva Food Science, 2016, 21(3): 281-288.

[9]   Derya D, Ali C D. Optimización del bioproceso del pigmento de astaxantina por cuatro especies de levadura diferentes utilizando residuos de trigo [J]. Biocatal⁃ ysis yAgricultural Biotechnology, 2016, 7: 1-6.

[10]   Fátima en Fátima H, Animesh D, Mahendra T, et al. Se intensificó la producción verde de astaxantina de Haematococcus pluvialis[J]. Food yBioproducts Processing, 2016, 99: 1-11.

[11]   Shang MM, Ding W, Zhao Y T, et al. Aumento de la producción de astaxantina a partir de Haematococcu spluvialis usando hidroxibutimonosuero [J]. Journal of Biotechnology, 2016, 236: 199-207.

[12]   James A E, Phillip B, Paul B, et al. Revisión de las investigaciones de genotoxicidad y carcinogenicidad en ratas con astaxantina [J]. Tox⁃ icology yPharmacology, 2016, 75: 5-19.

[13]    Mao Mao Mao Mao Mao Mao Mao Mao Mao Mao X M,  T, sol D  Z, et al.  Respuestas diferenciales del microalgaverde Clorella zofingiensisto la inanición de diversos nutrientes para el aceite y astaxantina producción [J]. biorecursoTech⁃ nology, 2018, 249: 791-798.

[14]   Chen J H, Liu L, Wei D. Mejora la producción de astaxantina por Chromochloris zofingiensisin a  Basado en microplacas cultura Régimen de alto luz  Irradiación [J]. biorecurso Tecnología,  2017, 245: 518-529.

[15]   Chen J H, Wei D, Lim P E. coproducción mejorada de astaxantina y Los lípidos Por el verde microalga  Chromochloris zofingiensis: Selected fitohormonas as  positivo Estimuladores [J]. Bioresource Tecnología,2020,295: 122-242.

[16]   Zhang Z, Huang J H, Sun D Z, et al. Cultivo en dos pasos para la producción de astaxantina en Chlorella zofingiensiutilizando un fotobiorreactor flotante rotlibre de energía patent(RFP)[J]. Bioresource Technology, 2017, 224: 515-522.

[17]   Li LM, Chen Z, Huang Q. exógeno − -aminobutírico ácido pro − motes biomasa y astaxantina producción en Haematococcus plu − vialis[J]. Algal Research, 2020, 52: 102089.

[18]   Oder H C R, Ana G I, Leonardo R, et al. Evaluación de la biosíntesis de astaxantina por Haematococcus pluvialis cultivada en medio de cultivo añadido of  cassava Aguas residuales [J]. internacional biodeteriation& Biodegradación, 2021, 163: 105269.

[19]   Young E K, Ibrahim A M, Nakyeong L, et al. Mejora de la producción de astaxan⁃ thin por Haematococcus pluvialis usando magnesio ami⁃ noclay  Nanopartículas [J].  Bioresource   Technology,    2020,   307:123270.

[20]   Pan L, Wang H Y, Gu KR. nanoliposomas como vehículos para astax → anthin: caracterización, evaluación de liberación in vitro Y estructura [J]. Moléculas, 2018, 23: 2822.

[21]   Wang J H, Liu S W, Wang H, et al. Xanthophyllomyces dendrorhous de × rivedastaxantina regula el metabolismo lipídico y la microbiota intestinal en ratones obesos inducidos por una dieta alta en grasas [J]. Drogas marinas, 2019, 17: 337.

[22]    Md  M  R  S,  Liang Y  M,  Jay J C,  et  al.  Microalga verde productora de astaxantina Haematococcus Pluvialis: from single cell to High valorcommercial products[J]. Plant Science, 2016, 7: 531.

[23]   Susumu H, Sachiko U, Asako Y, et al. Búsqueda de hidroxilo rad − icals en solución acuosa por astaxantina encapsulada en liposomas [J]. Biológica biológica & Farmacéutico farmacéutico Boletín, 2012, 35(12): 2238-2242.

[24]   Yasemen Y, Mehmet C, Mahmut Y, et al. Cambios estacionales en el contenido total de carotenoides de los camarones marinos silvestres (Penaeus semisul - catus y Metapenaeus monoceros) que habitan en el Mediterráneo oriental [J]. Food Chemistry, 2004, 88: 267-269.

[25]   Ryan J W, Bryson K G, Scott R S, et al. Coloración roja en an an⁃ chialineshrimp:  Los carotenoides,  Genética genética  Variación,  and   Genes candidatos [J]. Biological Bulletin, 2020, 238: 119-130.

[26]   Nogueira N, Canadá P,Caboz J, et al. Efecto de diferentes niveles de astaxantina sintética sobre el crecimiento, el color de la piel y el metabolismo lipídico de pory rojo de tamaño comercial (Pagruspagrus)[J]. Animal AnimalFeed and Technology, 2021, 276: 114916.

[27]   Wu X G, Zhao L, Long X W, et al. Efectos de la suplementación dietética de polvo de Haematococcu spluvialis sobre el desarrollo gonadal, la coloración y la capacidad antioxidante de cangrejo chino macho adulto (Eriocheir sinensis)[J]. Aquaculture Research, 2017: 1-10.

[28]    Sigurgisladottir S, Parrish C C, Lall S P, et al. Efectos de astaxan⁃ thin feeding natural tocopherolsandon Atlantic salmon (Salvo sal⁃ ar) filet Quality [J]. Food Research International, 1994, 27: 23-32.

[29]   Md M R, Sanaz K, Kyung H C, et al. Efectos de la inclusión de astaxantina en la dieta on  Crecimiento, Músculo músculo músculo pigment and  Capacidad antioxidante of  juvenil Arco iris trucha (Oncorhynchus  Mykiss) [J]. Prev Nutr Food Sci, 2016, 21(3): 281-288.

[30] Zhang C, Deng X, Yao W, et al. Efectos de la astaxantina de diferentes fuentes sobre el rendimiento de crecimiento, el color de la carne y la capacidad antioxidante de la trucha arco iris [J]. Journal of Animal Nutrition, 2021, 33(2):1008-1029.

[31]     Kurnia A, Satoh S, Kuramoto D, et al. Efecto de diferentes thinsources de astaxan⁃ sobre la pigmentación de la piel de besugo rojo (Pagrus ma → jor)[J]. Aquaculture Sci, 2007, 55(3): 441-447.

[32]    Georges C, Maria M M P, Rui M. Pigmenting efficacy of astaxan⁃ thin fedto Rainbow Trout Oncorhynchus mykiss: Effect of Dietary astaxanthinand (en inglés) lípidos Fuentes [J]. Acuicultura, 2006, 257: 429 — 436.

[33]    Jiang J F, Waldo N O, Alex A, et al. Mejorar la coloración de los peces ornamentales marinos Pseudochromisfridmani utilizando fuentes naturales y sintéticas de astaxantina [J]. Algal Research, 2019, 42:101596.

[34]    Bell N A, Jeffrey S, Macisaac J L, et al. The effect of of Lobster meal on The growth performance and pigmentation of The common Gold → fish (Carassiusauratus)[J]. Aquaculture Reports, 2019, 13: 100187.

[35] Wang Junhui, Xiong Jianli, Zhang Dongyang, et al. Efectos de la administración de suplementos de astaxantina en la alimentación sobre el crecimiento, el color corporal, la capacidad antioxidante y la inmunidad de la carpa koi [J]. Journal of Animal Nutrition, 2019, 31(9): 4144-4151.

[36]    Lewis E, Kristian C, Donna S, et al. The behavioural effects of sup⁃ pplementing Diet with synthetic and naturally sourced astaxanthin in a ornamental fish (Puntius titteya)[J]. Applied Animal Behav⁃ iour Science, 2016, 182: 94-100.

[37]   René C, Genevieve N S. efecto de diferentes carotendietsobre el patrón pigmentdel cangreermitaño Clibanariuserythropus Latreille (Crustacea: Decapoda) [J]. BiochemPhmiol, 1995, 11(4): 533-538.

[38]   Daly B, Swingle J S, Eckert G L. Dietary astaxanthsupp⁃ tion for hatchery-cultured red King Crab, Paralithodes camtschati⁃ cus, juveniles[J]. Aquaculture Nutrition, 2013, 19(3): 312-320.

[39]   V H,  Nguyen T D P, Michael F T. efecto de astaxantina y colesterol sobre el crecimiento, la supervivencia y la pigmentación de langosta espinadulta, Panulirus ornatus (Decapoda, Palinuridae)[J]. AACL Bio⁃ flux, 2010, 3: 261-268.

[40]   Katrin K, Kerli H, Mari L, et al. El efecto de dos alimentaciones diferentes sobre el crecimiento, color del caparazón, maduración y mortalidad en cangrejo jaspeado (Procambarus fallax F. virginalis)[J]. Aquaculture International ⁃ tional, 2015, 23: 185-194.

[41]    Bhavsar S  P,  Singh K  G,  Sharma L  P.  microbiano producción Del pigmento astaxantina usando Mrineshrimp[J]. Indian Journal of Geo- Marine Science, 2016, 45(2): 352-357.

[42]   Nguyen H N, Jane Q, Daniel P, et al. Heredabilidad del color corporal y su asociación genética con características morfométricas en camarón bananero (Fenneropenaeus merguiensis)[J]. BMC Genetic, 2014, 15: 132.

[43]    Long X W, Wu X G, Zhao L, et al. Efectos de la suplementación dietética con polvo de células de Haematococcus pluvialis sobre la coloración, el desarrollo ovular y la capacidad antioxidante de mujeres adultas adultas guantes Cangrejo, Eriocheir sinensis[J]. Acuicultura, 2017, 473:

[44]     Han T, Li X Y, Wang J T, et al. Efectos de la astaxantina diet(AX) suplementsobre la pigmentación, capacidad antioxidante y nutricional value  of  La natación Cangrejo, Portunus  Trituberculatus [J]. Aquaculture, 2017, 490: 169-177.

[45]    Basioura A, Tsakmakidis I A, Martinez E A, et al. Efecto de astax − antina en extensores sobre la calidad espermática y variables funcionales de frozen-descongel.  El jabde  Semen [J].  Animal   Reproducción reproducción  Science, 2020, 218: 106478.

[46]   Wang L, Zhuang L L. astaxantina mejora la indupor lipopolysaccha⁃ Subfertilidad en vía ratón Vía antioxidante Nrf2 / HO-1 [J]. Dosis-respuesta, 2019, 17(3): 1-10.

[47]   Países y territorios de ultramar M  A  N. actividades antioxidantes de la astaxantina y los carotenoides relacionados [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2000, 48: 1150-1154.

[48]   Sorin U, Amirhossein S, Maria C S, et al. Cambios en el perfil lipídico y en la glucosa después de la suplementación con astaxantina: a systematic re⁃ view Y metanálisis de los Ensayos controlados [J]. Arch Med Sci, 2015, 11: 253-266.

[49]    Barim O Z, Sahin H. The influence of Dietary antioxidante onovari⁃ an eggs and levels of vitamin E, C,A, astaxanthin, β -caroteno and oxidatifstres in tiles of Astacus leptodactylus (Eschscholtz) dur⁃ ing reproduction[J]. Biología Molecular, 2016, 62(14): 1-10.

[50]    Yi X, Shen H, Li J, et al. Efectos de la vitamina E dietética y astaxan⁃ thin sobre el crecimiento, el color de la piel y la capacidad antioxidante de Larimichthy scrocea[J]. Nutrición en acuicultura, 2017:

1-9.

[51]    Ma S L, Li X X, Huang D, et al. Efectos de la levadura de cromo y la astaxantina en la dieta sobre el rendimiento de crecimiento, la capacidad antioxidante y la resistencia al estrés térmico del abulhaliotis discus hannai [J]. Aquaculture International, 2021, 29: 911-924.

[52]   Nikoo M, Falahatkar B, Alekhorshid M, et al. Respuestas al estrés fisiológico en kutum Rutilus frisii kutum sometidos a cautiverio [J]. International Aquatic Research, 2010, 2: 55-60.

[53]    Liu F, Shi H Z, Guo Q S, et al. Efectos de astaxantina y emodina sobre el crecimiento, resistencia al estrés y resistencia a enfermedades de bagre amarillo (Pelteobagrus fulvidraco) [J]. pescadoand mariscos Immunolo⁃ Gy, 2016, 51: 125-135.

[54]    Merchie G, Kontara E, Lavens P, et al. Efecto de la vitamina C y astaxantina on  El estrés o el estrés and  Resistencia a enfermedades Penaeus monodon (Fabricius) [J]. La investigación en acuicultura, 1998, 29: 579-585.

[55]    Chien Y H, Pan C H, Hunter B. la resistencia a las tensiones físicas por Penaeus  monodon  juveniles fed dietas supplemented Con astaxantina [J]. Aquaculture, 2003, 216: 177-191.

[56]   Pan C H, Chien Y H, Hunter B. la resistencia a la tensión de amoníaco de Penaeus monodon  Fabricius fed  dietas Suplementado con astaxantina [J]. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 2003, 297: 107-118.

[57]    Supamattaya K, Kiriratnikom S, Boonyaratpalin M, et al. Efecto de un extracto de Dunaliella sobre el rendimiento de crecimiento, estado de salud, inmune respuesta and  enfermedad Resistencia resistencia in  negro Tigre tigre Camarón (Penaeus monodon)[J]. Aquaculture, 2005, 248: 207-216.

[58]    Zhang J, Liu Y J, Tian L X, et al. Efectos de la astaxantina en la dieta sobre el crecimiento, la capacidad antioxidante y la expresión génica en el camarón blanco del Pacífico Litopenaeus Vannamei [J].Nutrición para la acuicultura, 2013, 19:917-927.

[59]    Niu J, Tian L X, Liu Y J, et al. Efecto de la astaxantina en la dieta sobre el crecimiento, la supervivencia y la tolerancia al estrés de camarpostlarval, Litope⁃ naeus vannamei[J]. Revista de la sociedad mundial de acuicultura, 2009, 40: 795-802.

[60]    Wang H, Dai A, Liu F, et al. Efectos de la astaxantina dieten el inmune Respuesta, Resistencia resistencia to  blanco punto complicación virus  Y transcride genes de enzimas antioxidantes en camarcamarblanco del Pacífico Litopenaeus vannamei[J].  En irán Journal  of  pesca Sciences, 2015, 14: 699-718.

[61]   Tizkar B, Seidavi A, Ponce-Palafox J, et al. The effect of astaxanthin on resistance of Juvenile gawns Macrobrachium nipponense (Decapoda: Palaemonidae) to physical and Chemical stress[J]. Re⁃ vista de biología Tropical, 2014, 62: 1331-1341.

[62]    Jiang X D, Zu L, Wang Z Y, et al. La astaxantina microalgal podría mejorar la capacidad antioxidante, la inmunidad y la resis⁃ tancia del amoníaco del cangrejo chino juvenil, Eriocheir sinensis[J]. Inmunología de peces y mariscos, 2020, 102: 499-510.

[63]    Li M Y, Guo W Q, Guo G L, et al. Efectos de la astaxantina en la dieta indupor lipopolisacáridos oxidoxidoxidoxid Estrés, Inmune inmune inmune Respuestas y expresión génica relacionada con el receptor glucocorticoide (GR) en Channa argu[J]. Aquaculture, 2020, 517: 734-816.

[64]   Li M Y, Sun L, Niu X T, et al. Astaxantina protege la respuesta inflamindupor lipopolysac⁃ charien Channa argus a través de la inhibición Fabricación en la cual: and  MAPKs  señalización Vías [J]. Fish  And Seafood Immunology, 2019, 86: 280-286.

[65]    Xie J J, Fang H H, He X S, et al. Estudio del mecanismo de astaxantina sintética and  Haematococcus  pluvialis   Mejorar la el Rendimiento de crecimiento y capacidad antioxidante bajo estrés hipoxia aguda de Oro oro Pompano (Trachinotus ovatus)  and  Mejorar la Anti-in ⁃ flammat. por La activación Nrf2-ARE camino to  antagonize La vía NF- − B [J]. Aquaculture, 2020, 518: 657-734.